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Revista Cubana de Medicina Tropical

ISSN 1561-3054 (Digital)
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2021, Número 2

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Rev Cubana Med Trop 2021; 73 (2)


β-lactamasas AmpC en bacilos gramnegativos de aislados clínicos en un centro hospitalario de tercer nivel en Colombia

Mora MDP, Torres CMI, Sussman POA
Texto completo Cómo citar este artículo Artículos similares

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 24
Paginas: 1-17
Archivo PDF: 407.96 Kb.


PALABRAS CLAVE

resistencia a antibióticos, β-lactamasas AmpC, genes.

RESUMEN

Introdución: Las β-lactamasas AmpC son enzimas con capacidad hidrolítica, pueden ser de tipo constitutivo o inducible. No existe un método estandarizado para su determinación fenotípica por normas internacionales; la detección de estas mediante el uso de la biología molecular podría ser una alternativa útil para vigilancia y control de la diseminación de clones circulantes en el entorno hospitalario.
Objetivo: Determinar el fenotipo de resistencia y genes expresados en la producción de β-lactamasas AmpC en bacilos gramnegativos de aislados clínicos en un centro hospitalario.
Métodos: Estudio observacional, descriptivo y de corte transversal. Se seleccionaron 78 cepas bacterianas como portadoras de β- lactamasas AmpC. Se les realizó prueba de aproximación de disco; a las cepas con resultado positivo se seleccionaron para extracción de ADN y PCR multiplex para detección de 6 familias genes AmpC. Se determinó la frecuencia por tipo de muestra, servicio y comparación con el perfil de susceptibilidad.
Resultados: De las cepas seleccionadas con fenotipo AmpC, el 57,6 % (45/78) se consideró caso confirmado β-lactamasas AmpC por su positividad para la prueba confirmatoria. La técnica molecular utilizada confirmó en el 40 % (18/45) la presencia de genes AmpC. Se obtuvo con mayor frecuencia el gen MIR n= 9 (20 %), seguido de DHA n= 7 (15 %).
Conclusiones: La detección oportuna de genes que codifican para β-lactamasas AmpC permite establecer estrategias para evitar la circulación mediada por plásmidos en hospitales, así como utilizar mejores opciones terapéuticas que no induzcan a otros mecanismos de resistencia.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Kohlmann R, Bähr T, Gatermann SG. Species-specific mutation rates for ampC derepression in Enterobacterales with chromosomally encoded inducible AmpC ß-lactamase. J Antimicrob Chemother. 2018;73(6):1530-6.

  2. Rada AM, Hernández-Gómez C, Restrepo E, Villegas MV. Distribución y caracterización molecular de betalactamasas en bacterias gramnegativas en Colombia, 2001-2016. Rev Biomédica. 2019;39(1):199-220.

  3. Ku Y-H, Lee M-F, Chuang Y-C, Yu W-L. Detection of plasmid-mediated ß-Lactamase genes and emergence of a novel AmpC (CMH-1) in Enterobacter cloacae at a medical Center in Southern Taiwan. JCM. 2019;8(1):8.

  4. Pérez-Pérez FJ, Hanson ND. Detection of plasmid-mediated AmpC ß-lactamase genes in clinical isolates by using multiplex PCR. JCM. 2002;40(6):2153-62.

  5. Velandia DPL, Caycedo MIT, Orduz LMC, Quiroga CFP. Determinación de genes que codifican la resistencia de betalactamasas de espectro extendido en bacilos gramnegativos aislados de urocultivos. ISUB. 2016;3(2):107-26.

  6. Ghonaim R, Moaety H. Comparison between Multiplex PCR and Phenotypic Detection Methods for Identifying AmpC ß-lactamases Among Clinical Isolates of Enterobacteriaceae in Zagazig University Hospitals, Egypt. Clin Microbiol 2018, 7:3. Disponible en: http://10.4172/2327-5073.1000313

  7. Ding J, Chen Z, Li Y, Zhang Q, Li X. Detection of integrons in Escherichia coli producing plasmid-mediated AmpC ß-lactamases. Int J Clin Exp Med. 2019;12(2):1690-6.

  8. Chakraborty A, Adhikari P, Shenoy S, Saralaya V. Characterization of plasmid mediated AmpC producing Escherichia coli clinical isolates from a tertiary care hospital in South India. Indian J Pathol Micr. 2014;57(2):255.

  9. Liu X, Liu Y. Detection of plasmid-mediated AmpC ß-lactamase in Escherichia coli. Biomed Rep. 2016;4(6):687-90. Disponible en: http://10.3892/br.2016.661.

  10. Reuland EA, Halaby T, Hays JP, de Jongh DM, Snetselaar HD, Van Keulen M, et al. Plasmid-mediated AmpC: prevalence in community-acquired isolates in Amsterdam, the Netherlands, and risk factors for carriage. PLoS One. 2015;10(1).

  11. Khari FIM, Karunakaran R, Rosli R, Tay ST. Genotypic and phenotypic detection of AmpC ß-lactamases in Enterobacter spp. isolated from a teaching hospital in Malaysia. PloS one. 2016;11(3).

  12. Tamma PD, Doi Y, Bonomo RA, Johnson JK, Simner PJ. A Primer on AmpC ß-Lactamases: Necessary Knowledge for an Increasingly Multidrug-resistant World. Clin Infect Dis. 2019;69(8):1446-55.

  13. Seral C, Gude MJ, Castillo FJ. Emergencia de ß-lactamasas AmpC plasmídicas (pAmpC ó cefamicinasas): origen, importancia, detección y alternativas terapéuticas. Rev Esp Quimioter. 2012;25(2).

  14. Osante NP. Detección y bases genéticas de beta-lactamasas AmpC y carbapenemasas en aislados clínicos y comensales de enterobacterias [Tesis. España: Universidad de La Rioja; 2015.

  15. Ahmed SF, Ali MMM, Mohamed ZK, Moussa TA, Klena JD. Fecal carriage of extended-spectrum ß-lactamases and AmpC-producing Escherichia coli in a Libyan community. Ann Clin Microb Ant. 2014;13(1):22.

  16. Lee C-H, Lee Y-T, Kung C-H, Ku W-W, Kuo S-C, Chen T-L, et al. Risk factors of community-onset urinary tract infections caused by plasmid-mediated AmpC ß-lactamase-producing Enterobacteriaceae. J Microbiol Immunol Infect. 2015;48(3):269-75.

  17. Abdalhamid B, Albunayan S, Shaikh A, Elhadi N, Aljindan R. Prevalence study of plasmid-mediated AmpC ß-lactamases in Enterobacteriaceae lacking inducible ampC from Saudi hospitals. JMM. 2017;66(9):1286-90.

  18. Montaña ELV, Salguero JCS, Torres LFB, Ortega HD. ß-lactamasas AmpC en bacilos gramnegativos aislados en una clínica de tercer nivel. Revista Laboratorio Actual Current Laboratory Journal. 2015;(46):11-9.

  19. Japoni-Nejad A, Ghaznavi-Rad E, van Belkum A. Characterization of plasmid-mediated AmpC and carbapenemases among Iranain nosocomial isolates of Klebsiella pneumoniae using phenotyping and genotyping methods. PHRP. 2014;5(6):333-8.

  20. Palmieri M, Schicklin S, Pelegrin AC, Chatellier S, Franceschi C, Mirande C, et al. Phenotypic and genomic characterization of AmpC-producing Klebsiella pneumoniae from Korea. Ann Lab Med. 2018;38(4):367-70.

  21. Wassef M, Behiry I, Younan M, El Guindy N, Mostafa S, Abada E. Genotypic identification of AmpC ß-lactamases production in gramnegative Bacilli isolates. JJM. 2014;7(1).

  22. Coudron PE, Moland ES, Thomson KS. Occurrence and detection of AmpC beta-lactamases among Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, and Proteus mirabilis isolates at a veterans medical center. JCM. 2000;38(5):1791-6.

  23. Kazi M, Ajbani K, Tornheim JA, Shetty A, Rodrigues C. Multiplex PCR to detect pAmpC ß-lactamases among enterobacteriaceae at a tertiary care laboratory in Mumbai, India. Microbiology. 2018;165(2):246-50.

  24. Zorgani A, Daw H, Sufya N, Bashein A, Elahmer O, Chouchani C. Co-Occurrence of Plasmid-Mediated AmpC ß-Lactamase Activity Among Klebsiella pneumoniae and Escherichia coli. TOMICROJ. 2017;11:195.




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