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Instituto Nacional de Salud Pública

2023, Número 4

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salud publica mex 2023; 65 (4)


Liberación aérea de mosquitos Aedes aegypti machos utilizando un vehículo aéreo no tripulado: estrategia novedosa de control

Valdez-Delgado KM, Ríos-Delgado JC, Nettel-Cruz JA, Angulo-Kladt R, Villarreal-Treviño C

Idioma: Ingles.
Referencias bibliográficas: 26
Paginas: 387-393
Archivo PDF: 304.85 Kb.


RESUMEN

Objetivo. Desarrollar una metodología para el enfriamiento, manejo y transporte de mosquitos Aedes aegypti machos, criados en condiciones de insectario, para su liberación en el campo con vehículos no tripulados. Material y métodos. Se utilizó una población de Ae. aegypti de diferentes zonas de Tapachula, Chiapas. Se realizaron pruebas de laboratorio para determinar el efecto de la temperatura y tiempo de enfriamiento en el derribo, recuperación de machos y éxito copulatorio. Resultados. Se utilizó la temperatura de enfriamiento de 3 ± 1ºC durante 30 min como temperatura de derribo para el manejo, empaque, transporte y liberación de machos Ae. aegypti. Los machos sometidos a todo el proceso, incluida la prueba de liberación aérea de semi-campo, mostraron una actividad de comportamiento sexual normal, obteniendo 100% de hembras inseminadas. Conclusión. Estos resultados presentan la factibilidad de aplicar una nueva metodología de control utilizando un vehículo aéreo no tripulado como apoyo a la técnica de liberación de insectos estériles (SIT), uso de Wolbachia o ambos, con machos de Ae. aegypti, para diseñar estrategias de control de sus poblaciones.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Ibañez-Bernal S, Gómez-Dantés H. Los vectores del dengue en México:una revisión crítica. Salud Publica Mex. 1995;37(supl):s53-63.

  2. Kuri-Morales P, Correa-Morales F, González-Acosta C, Sánchez-TejedaG, Dávalos-Becerril E, Fernanda Juárez-Franco, et al. First report of Stegomyiaaegypti (= Aedes aegypti) in Mexico City, Mexico. Med Vet Entomol.2017;31(2):240-2. https://doi.org/10.1111/mve.12225

  3. Scott TW, Takken W. Feeding strategies of anthropophilic mosquitoesresult in increased risk of pathogen transmission. Trends Parasitol.2012;28(3):114-21. https://doi.org/10.1016/j.pt.2012.01.001

  4. Díaz-González EE, Kautz TF, Dorantes-Delgado A, Malo-García IR,Laguna-Aguilar M, Langsjoen RM, et al. First Report of Aedes aegypti transmissionof chikungunya virus in the Americas. Am J Trop Med Hyg. 2015;93(6):1325-9. https://doi.org/10.4269/ajtmh.15-0450

  5. Garcia-Luna SM, Weger-Lucarelli J, Rückert C, Murrieta RA, YoungMC, Byas AD, et al. Variation in competence for ZIKV transmissionby Aedes aegypti and Aedes albopictus in México. PLoS Negl Trop Dis.2018;12(7):e0006599. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0006599

  6. Villegas-Trejo A, Che-Mendoza A, González-Fernández M, Guillermo-May G, González-Bejarano H, Dzul-Manzanilla F, et al. Control enfocadode Aedes aegypti en localidades de alto riesgo de transmisión de dengueen Morelos, México. Salud Publica Mex. 2011;53(2):141-51. https://doi.org/10.1590/s0036-36342011000200007

  7. Ordoñez-González JG, Cisneros-Vázquez LA, Danis-Lozano R, Valdez-Delgado KM, Fernández-Salas I, Penilla-Navarro RP, et al. Nebulizacióntérmica intradomiciliar de la mezcla de flupyradifurona y transflutrina enmosquitos Aedes aegypti susceptibles y resistentes a piretroides en el Sur deMéxico. Salud Publica Mex. 2020;62(4):432-8. https://doi.org/10.21149/11142

  8. López-Solís AD, Castillo-Vera A, Cisneros J, Solis-Santoyo F, Penilla-NavarroRP, Black IV WC, et al. Resistencia a Insecticidas en Aedes Aegypti yAedes albopictus (Diptera: Culicidae) de Tapachula, Chiapas, México. SaludPublica Mex. 2020;62(4):439-46. https://doi.org/10.21149/10131

  9. Janich AJ, Saavedra-Rodriguez K, Vera-Maloof FZ, Kading RC, RodríguezAD, Penilla-Navarro P, et al. Permethrin resistance status and associatedmechanisms in Aedes albopictus (Diptera: Culicidae) From Chiapas, Mexico. JMed Entomol. 2021;58(2):739-748. https://doi.org/10.1093/jme/tjaa197

  10. Donald CL, Siriyasatien P, Kohl A. Toxorhynchites species: a review ofcurrent knowledge. Insects. 2020;11(11):747. https://doi.org/10.3390/insects11110747

  11. Huang Y-JS, Higgs S, Vanlandingham DL. Biological control strategiesfor mosquito vectors of arboviruses. Insects. 2017;8(1):21. https://doi.org/10.3390/insects8010021

  12. Scholte E-J, Knols BGJ, Samson RA, Takken W. Entomopathogenicfungi for mosquito control: A review. J Insect Sci. 2004; 4:19 https://doi.org/10.1093/jis/4.1.19

  13. Liu WL, Yu HY, Chen YX, Chen BY, Leaw SN, Lin CH, et al. Lab-scalecharacterization and semifield trials of Wolbachia Strain wAlbB in aTaiwan Wolbachia introgressed Ae. aegypti strain. PLoS Negl Trop Dis.2022;16(1):e0010084. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0010084

  14. World Health Organization. Global vector control response 2017–2030. Geneva: World Health Organization, 2017.

  15. Villarreal C, Arredondo-Jiménez JI, Rodriguez MH, Ulloa A. Colonizationof Anopheles pseudopunctipennis from Mexico. J Am Mosq ControlAssoc. 1998;14(4):369-72.

  16. Danis-Lozano R, Correa-Morales F. Cría de mosquitos Culicidae yevaluación de insecticidas de uso en salud pública. Cuernavaca: InstitutoNacional de Salud Pública, 2021.

  17. Kittayapong P, Ninphanomchai S, Limohpasmanee W, Chansang C,Chansang U, Mongkalangoon P. Combined sterile insect technique andincompatible insect technique: The first proof-of-concept to suppress Aedesaegypti vector populations in semi-rural settings in Thailand. PLoS Negl TropDis. 2019;13(10):e0007771. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0007771

  18. Caragata EP, Dutra HL, Moreira LA. Inhibition of Zika virus by Wolbachiain Aedes aegypti. Microbcell. 2016;3(7):293-5. https://doi.org/10.15698/mic2016.07.513

  19. Culbert NJ, Gilles JRL, Bouyer J. Investigating the impact of chillingtemperature on male Aedes aegypti and Aedes albopictus survival. PLoSOne. 2019;14(8):e0221822. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0221822

  20. Diniz DFA, de Albuquerque CMR, Oliva LO, de Melo-Santos MAV, AyresCFJ. Diapause and quiescence: dormancy mechanisms that contribute tothe geographical expansion of mosquitoes and their evolutionary success.Parasit Vectors. 2017;10(1):310. https://doi.org/10.1186/s13071-017-2235-0

  21. Villarreal-Treviño C, Ríos-Delgado JC, Penilla-Navarro R, Rodríguez AD,López JH, Nettel-Cruz J, et al. Composition and abundance of anophelinespecies according to habitats diversity in México. Salud Publica Mex.2020;62(4):388-401. https://doi.org/10.21149/10111

  22. Culbert NJ, Maiga H, Somda NSB, Gilles JRL, Bouyer J, Mamai W. Longevityof mass-reared, irradiated and packed male Anopheles arabiensisand Aedes aegypti under simulated environmental field conditions. ParasitVectors. 2018;11(1):603. https://doi.org/10.1186/s13071-018-3191-z

  23. Culbert NJ, Lees RS, Vreysen MJB, Darby AC, Gilles JRL. Optimisedconditions for handling and transport of male Anopheles arabiensis: effectsof low temperature, compaction, and ventilation on male quality. EntomolExp Appl. 2017;164(3):1-8. https://doi.org/10.1111/eea.12610

  24. Villarreal-Treviño C, Vásquez GM, López-Sifuentes VM, Escobedo-VargasK, Huayanay-Repetto A, Linton YM, et al. Establishment of a free-mating,long-standing and highly productive laboratory colony of Anophelesdarlingi from the Peruvian Amazon. Malar J. 2015;14:227. https://doi.org/10.1186/s12936-015-0733-0

  25. King AM, MacRae TH. Insect heat shock proteins during stress anddiapause. Annu Rev Entomol. 2015;60:59-75. https://doi.org/10.1146/annurev-ento-011613-162107

  26. Zerebecki RA, Sorte CJ. Temperature tolerance and stress proteinsas mechanisms of invasive species success. PLoS One. 2011;6(4):e14806.https://doi.org/10.1371/journal.pone.0014806




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