medigraphic.com

2024, Número 2

<< Anterior Siguiente >>

Enf Infec Microbiol 2024; 44 (2)


Validación del uso de gotas de sangre seca para la detección de anticuerpos IgG e IgA contra SARS-COV-2

García CS, Herrera OA, Rojas DHU, Olamendi PM, Xibille FDX, Sánchez AMÁ

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 16
Paginas: 53-57
Archivo PDF: 209.58 Kb.


RESUMEN

Antecedentes. Las gotas de sangre seca (dried blood spots, DBS) son una alternativa para identificar enfermedades. Se evaluó el uso de DBS para detectar anticuerpos IgG e IgA contra SARS-COV-2 mediante ELISA.
Material y método. Se formó un biobanco de muestras pareadas de plasma y dbs. Se evaluaron dos volúmenes para la elusión de los DBS, 250 µl y 400 µl, para detectar anticuerpos mediante pruebas comerciales. Se calculó sensibilidad, especificidad, valor predictivo positivo, valor predictivo negativo, correlación de Sperman, concordancia kappa y se realizaron gráficos Bland-Altman.
Resultados. La sensibilidad y especificidad para anticuerpos igg con DBS eluidos en 250 µl fue 98.9 y 100%, y con 400 µl fue de 97.4 y 100%. Los índices de IgG mostraron una mayor dispersión a partir del valor de 6. El presente estudio es de los primeros en reportar una validación de IgA con DBS, se encontró una sensibilidad y especificidad de 100 y 97.8%, así como una mayor dispersión a partir del índice de 12.
Conclusión. Es factible utilizar DBS para detectar anticuerpos IgG e IgA contra SARS-COV-2 en estudios epidemiológicos, ya que presentan una buena concordancia y correlación con plasma.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Okba, N.M.A., Müller, M.A., Li, W., Wang, C., GeurtsvanKessel, C.H., Corman, V.M. et al., “Severe acute respiratorysyndrome coronavirus 2-specific antibody responsesin coronavirus disease patients”, Emerg Infect Dis, 2020, 26: 1478-1488.

  2. Enderle, Y., Foerster, K. y Burhenne, J., “Clinical feasibilityof dried blood spots: analytics, validation, and applications”,J Pharm Biomed Anal, 2016, 25, 130: 231-243.

  3. Smit, P.W., Elliott, I., Peeling, R.W., Mabey, D. y Newton,P.N., “An overview of the clinical use of filter paper inthe diagnosis of tropical diseases”, Am J Trop Med Hyg,2014, 90: 195-210.

  4. Déglon, J., Thomas, A., Mangin, P. y Staub, C., “Directanalysis of dried blood spots coupled with mass spectrometry:concepts and biomedical applications”, AnalBioanal Chem, 2012, 402: 2485-2498.

  5. Ross, R.S., Stambouli, O., Grüner, N., Marcus, U., Cai,W., Zhang, W. et al., “Detection of infections with hepatitisb virus, hepatitis c virus, and human immunodeficiencyvirus by analyses of dried blood spots-performancecharacteristics of the architect system and two commercialassays for nucleic acid amplification”, Virol J,2013, 10: 72.

  6. Snijdewind, I.J., Van Kampen, J.J., Fraaij, P.L., Van derEnde, M.E., Osterhaus, A.D. y Gruters, R.A., “Currentand future applications of dried blood spots in viral diseasemanagement”, Antiviral Res, 2012, 93: 309-321.

  7. García-Cisneros, S., Sánchez-Alemán, M.A., Conde-González, C.J., Lara-Zaragoza, S.J., Herrera-Ortiz, A.,Plett-Torres, T. et al., “Performance of elisa and Westernblot to detect antibodies against hsv-2 using dried bloodspots”, J Infect Public Health, 2019, 12: 224-228.

  8. García-Cisneros, S., Olamendi-Portugal, M.L., Herrera-Ortiz, A., Conde-González, C.J., López-Gatell, H. ySánchez-Alemán, M.A., “Detección de anticuerposcontra vih a partir de muestras de sangre seca en papelfiltro”, Salud Pública Mex, 2017, 59: 602-603.

  9. Cholette, F., Mesa, C., Harris, A., Ellis, H., Cachero, K.,Lacap, P. et al., “Dried blood spot specimens for sarscov-2 antibody testing: a multi-site, multi-assay comparison”,plos One, 2021, 16: e0261003.

  10. Meyers, E., Heytens, S., Formukong, A., Vercruysse,H., De Sutter, A., Geens, T. et al., “Comparison of driedblood spots and venous blood for the detection of sarscov-2 antibodies in a population of nursing home residents”,Microbiol Spectr, 2021, 9: e0017821.

  11. Walker, G.J., Davis, R., Naing, Z., McEntee, B., Lu, Y., Denadija,T. et al., “Serological detection of sars-cov-2 iggusing commercially available enzyme immunoassayson dried blood spots collected from patients”, MicrobiolSpectr, 2021, 9 (3): e0124521.

  12. Montesinos, I., Gruson, D., Kabamba, B., Dahma, H.,Van den Wijngaert, S., Reza, S. et al., “Evaluation of twoautomated and three rapid lateral flow immunoassaysfor the detection of anti-sars-cov-2 antibodies”, J ClinVirol, 2020, 128: 104413.

  13. Rikhtegaran Tehrani, Z., Saadat, S., Saleh, E., Ouyang,X., Constantine, N., DeVico, A.L. et al., “Performance ofnucleocapsid and spike-based sars-cov-2 serologic assays”,plos One, 2020, 15: e0237828.

  14. Morley, G.L., Taylor, S., Jossi, S., Pérez-Toledo, M., Faustini,S.E., Marcial-Juárez, E. et al., “Sensitive detectionof sars-cov-2-specific antibodies in dried blood spotsamples”, Emerg Infect Dis, 2020, 26: 2970-2973.

  15. Cook, A.M., Faustini, S.E., Williams, L.J., Cunningham,A.F., Drayson, M.T., Shields, A.M. et al., “Validation of acombined elisa to detect igg, iga and igm antibody responsesto sars-cov-2 in mild or moderate non-hospitalisedpatients”, J Immunol Methods, 2021, 494: 113046.

  16. Maritz, L., Woudberg, N.J., Bennett, A.C., Soares, A.,Lapierre, F., Devine, J. et al., “Validation of high-throughput,semiquantitative solid-phase sars coronavirus-2serology assays in serum and dried blood spot matrices”,Bioanalysis, 2021, 13: 1183-1193.




2020     |     www.medigraphic.com