Clemente RO, Cruz SYC, Díaz RPA

Idioma: Español
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RESUMEN

Introducción: La placenta es un órgano feto materno transitorio, vital para la correcta evolución de la gestación. La cuantificación del desarrollo placentario en la preeclampsia es fundamental para el estudio y comprensión de esta enfermedad durante la gestación.
Objetivo: Describir morfométricamente el desarrollo microscópico en placentas de gestantes con preeclampsia grave al término de la gestación.
Métodos: Se realizó estudio de una serie de casos cuyo universo incluyó las placentas de 51 gestantes con diagnóstico de preeclampsia grave y parto por cesárea en el Hospital Vladimir Ilich Lenin de Holguín, Cuba en el período comprendido de mayo 2019 a mayo 2020. Se realizó muestreo no probabilístico y de tipo intencional y quedó constituida por 16 placentas de apariencia morfológica normal que cumplían con los criterios de inclusión definidos. El tejido placentario se procesó por el método de inclusión en parafina, se seccionó transversalmente y se tiñó con hematoxilina y eosina. Las preparaciones histológicas se digitalizaron con cámara acoplada al estereoscopio. El sistema morfométrico ImageJ permitió la cuantificación de las variables seleccionadas. Para el procesamiento estadístico se emplearon métodos de estadística descriptiva, como análisis de varianza y test de Newman Keuls.
Resultados: El estudio cuantitativo a nivel pericordón y la periferia del disco placentario arrojó diferencias significativas para el área de la vellosidad y la densidad óptica de fibrina alrededor de la vellosidad. Los valores promedio en el área de los nodos sincitiales no mostraron diferencias estadísticamente significativas.
Conclusiones: La morfometría microscópica de placentas en gestantes con preeclampsia permite cuantificar los efectos de la hipertensión arterial en el tejido placentario, contribuye a la caracterización histopatológica de la placenta y ofrece pautas importantes en el estudio de enfermedades de la gestación como la preeclampsia.

REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

1. Roberts RM, Green JA, Schulz LC. The evolution of the placenta. Reproduction. 2016 [acceso 02/02/2020];152(5):179-89. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5033709/

2. Carlson BM. Placenta y membranas extraembrionarias. En: Embriología humana y biología del desarrollo. 5 ed. Madrid: Ediciones Harcourt; 2014. p. 117-34.

3. Apaza Valencia J. Desarrollo placentario temprano: Aspectos fisiopatológicos. Rev Per Ginecol y Obstet. 2014 [acceso 02/02/2020];60(2):131-9. Disponible en: http://www.scielo.org.pe/scielo.php?pid=S230451322014000200006&script=sci_arttext&tlng=en

4. Mayrink J, Costa ML, Cecatti JG. Preeclampsia in 2018: Revisiting Concepts, Physiopathology, and Prediction. Scientific World Journal. 2018 [acceso 02/02/2020];6:268-76. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6304478/

5. Oviedo Ramírez MI. Caracterización histológica y expresión inmunohistoquímica de los marcadores p53 y p51 en el trofoblasto placentario en la preeclampsia [Tesis doctoral]. España: Universidad de Murcia; 2016. Disponible en: http://hdl.handle.net/10201/51622

6. Nye GA, Ingram E, Johnstone ED, Jensen OE, Schneider H, Lewis RM, et al. Human placental oxygenation in late gestation: experimental and theoretical approaches. J Physiol. 2018;596(23):5523-34. DOI: https://doi.org/10.1113/JP275633

7. Slator PJ, Hutter J, McCabe L, Dos Santos Gomes A, Price AN, Panagiotaki E, et al. Placenta Microstructure and Microcirculation Imaging with Diffusion MRI. Magnetic Resonance in Medicine. 2018;80:756-66. DOI: https://doi.org/10.1002/mrm.27036

8. Andescavage N, Kapse K, Lu YC, Barnett SD, Jacobs M, Gimovsky AC, et al. Normative placental structure in pregnancy using quantitative Magnetic Resonance Imaging. Placenta. 2021;112:172-9. DOI: https://doi.org/10.1016/j.placenta.2021.07

9. Gutiérrez Núñez R, Gutiérrez Alarcón BM, Izaguirre Remón R, Alarcón Zamora D. Informational foundations for the morphometric study of placenta in twin pregnancies. Rev. inf. Cient. 2021 [acceso 02/12/2021];100(6):3654. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=s1028-99332021000600004&ing=es

10. Imperio GE, Javam M, Lye P, Constantinof A, Dunk CE, Reis FM, et al. Gestational age-dependent gene expression profiling of ATP-binding cassette transporters in the healthy human placenta. J Cell Mol Med. 2019 [acceso 02/02/2020];23(1):610-8. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6307765/

11. Espinel Jara VM, Tapia Paguay MX, Castillo Andrade RE, Tito Pineda A, López Aguilar EC, Gordillo Alarcón AS, et al. Morfometría placentaria y condiciones de recién nacidos, según etnia de gestantes en dos hospitales de Imbabura-Ecuador. Enferm Inv. 2020;5(1):3-9. DOI: http://dx.doi.org/10.29033

12. Liu Y, Fan X, Wang R, Lu X, Dang YL, Wang H, et al. Single-cell RNA-seq reveals the diversity of trophoblast subtypes and patterns of differentiation in the human placenta. Cell Res. 2018 [acceso 02/02/2020];28(8):819-32. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6082907/

13. Andescavage N, Kapse K, Lu YC, Barnett SD, Jacobs M, Gimovsky AC, et al. Normative placental structure in pregnancy using quantitative Magnetic Resonance Imaging. Placenta. 2021;112:172-9. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.placenta.2021.07

14. Knöfler M, Haider S, Saleh L, Pollheimer J, Gamage TKJB, James J. Human placenta and trophoblast development: key molecular mechanisms and model systems. Cell Mol Life Sci. 2019 [acceso 02/02/2020];76(18):3479-96. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6697717/

15. Prieto Gómez R, Ottone Nicolás E, Sandoval Vázquez C, Saavedra SA, Bianchi Homero F. Aspectos morfocuantitativos de las vellosidades coriales libres en gestas normales, con Diabetes, Hipertensión arterial y restricción del crecimiento intrauterino. Int. J. Morphol. 2018 [acceso 02/12/2021];36(2):551-6. Disponible en: https://www.scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0717-95022018000200551&Ing=es

16. Cindrova Daviesa T, Fogartya N, Jonesc C, Kingdomd J, Burton G. Evidence of oxidative stress-induced senescence in mature, post-mature and pathological human placentas. Placenta. 2018;68:15-22. DOI: https://doi.org/10.1016/j.placenta.2018.06.307

17. Kasture V, Sundrani D, Randhir K, Wang G, Joshi S. Placental apoptotic markers are associated with placental morphometry. Placenta. 2021;115:1-11. DOI: https://doi.org/10.1016/j.placenta.2021.08

18. González Torres E. Apoptosis y necrosis sincitial placentaria: correlación con preeclampsia leve y severa y resultados perinatales adversos en el hospital general de Atizapan del 1.º de enero al 30 de diciembre de 2013. [Tesis de especialidad]. Toluca, México: Universidad Autónoma del Estado de México; 2014. [acceso 02/02/2020]. Disponible en: http://ri.uaemex.mx/handle/123456789/14898

19. Prieto Gómez R, Matamala F, Rojas M. Características morfológicas y morfométricas de la placenta de término, en recién nacidos pequeños para la edad gestacional (PEG) en la ciudad de Temuco-Chile. Int. J. Morphol. 2008 [acceso 02/02/2020];26(3):615-21. Disponible en: http://www.scielo.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=s0717-95022008000300017&Ing=en

20. Okae H, Toh H, Sato T, Hiura H, Takahashi S, Shirane K, et al. Derivation of Human Trophoblast Stem Cells. Cell Stem Cell. 2018 [acceso 02/02/2020];22(1):50-63. Disponible en: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1934590917304563?via3Dihub

21. Than NG, Romero R, Tarca AL, Kekesi KA, Xu Y, Xu Z, et al. Integrated Systems Biology Approach Identifis Novel Maternal and Placental Pathways of Preeclampsia. Front. Immunol. 2018;9:1661. DOI: https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.01661