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>Revistas >Revista Biomédica >Año 2000, No. 2


Jiménez-Díaz M, Martínez-Monge V
Validación de la determinación de colinesterasa plasmática humana a 340 nM
Rev Biomed 2000; 11 (2)

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 15
Paginas: 91-98
Archivo PDF: 48.54 Kb.


Texto completo




RESUMEN

Introducción. Se presenta la validación de un método de monitoreo continuo para la cuantificación de colinesterasa plasmática empleando ácido 6-6‘-ditiodinicotínico (DTNA) como indicador.
Materiales y métodos. Se emplearon muestras de plasma anticoagulado con EDTA. En este método la tiocolina liberada de la propioniltiocolina por la colinesterasa, reacciona con el DTNA liberando ácido tionicotínico y el aumento de absorbancia a 340 nM es proporcional a la actividad de la enzima.
Resultados. Las precisiones día a día para muestras con valores de colinesterasa bajos y altos mostraron coeficientes de variación de 4,2 y 3,5 por ciento y en un mismo día de 2,3 y 1,5 por ciento respectivamente. La bilirrubina y la hemoglobina no presentan interferencia. El reactivo de DTNA almacenado en botella ámbar es estable por al menos 6 meses a 4-8°C. Al comparar los resultados con métodos comerciales basados en la reacción de Ellman se obtuvo en un primer caso una ecuación de regresión lineal de Y = 1,13(X) - 274, con un coeficiente de correlación (r) de 0,987 y una desviación estándar sobre la línea de regresión (Sy/x) de 345 U/L. Y en un segundo caso, los resultados fueron: Y = 1,074(X) + 240; r = 0,977 y Sy/x = 491 U/L.
Discusión. El método evaluado constituye una alternativa precisa y más barata para la determinación de colinesterasa plasmática. Los datos obtenidos indican que el método es lineal y reproducible dentro del intervalo en el que se espera encontrar los valores de las muestras. El estudio comparativo con métodos comerciales mostró una buena correlación y posee la gran ventaja sobre los métodos con DTNB, de no sufrir interferencia por hemoglobina.


Palabras clave: Colinesterasa plasmática, métodos colorimétricos, organofosforados, carbamatos, pesticidas.


REFERENCIAS

  1. McQueen MJ. Clinical and analytical considerations in the utilization of cholinesterase measurements. Clin Chim Acta 1995; 237: 91-105.

  2. Kutty DM. Review: Biological functions of cholinesterase. Clin Biochem 1980; 13:239-43.

  3. Trundle D, Macial G. Detection of cholinesterase inhibition. The significance of cholinesterase measurements. Ann Clin Lab Sci 1988; 18:345-52.

  4. Michel HO. An electrometric method for the determination of red blood cell and plasma cholinesterase activity. J Lab Clin Med 1949; 34:1564-8.

  5. Ellin RI, Vicario P. A pH method for measuring blood cholinesterase. Arch Environ Health 1975; 30: 263-5.

  6. Dietz A, Rubinstein H, Lubrano T. Colorimetric determination of serum cholinesterase and its genetic variants by the propionyltiocholine-dithiobis (nitrobenzoic acid) procedure. En Selected Methods of Clinical Chemistry. Vol. 8. Washington DC: American Association of Clinical Chemistry; 1977. p. 41-6.

  7. Magnotti RA, Eberly JP, Quarm DEA, McConnell RS. Measurement of acetylcholinesterase in erythrocytes in the field. Clin Chem 1987; 33:1731-5.

  8. Schmidt E. Deutsche Gesellschaft für Klinische Chemie. Working Group of enzymes: Proposal of standard methods for the determination of enzyme catalitic concentrations in serum and plasma at 37 1C. II. Cholinesterase. Eur J Clin Chem Clin Biochem 1992; 30:163-70.

  9. Loof I. Experience with the Ellman mtehod: Proposal for a modification and an alternative method (PAP). En: Wilson BW, Jaeger B, Baetcke K, ed. Proc. U.S. EPA Workshop on cholinesterase methodologies. Arlington, VA. December 1991. Washington DC: Office of Pesticide Program, US EPA; 1992. p. 119-42.

  10. García-González JE. Causas del mal uso de los plaguicidas. Tecnología en Marcha 1996; 12: 25-37.

  11. Henao S, Corey G. Plaguicidas inhibidores de las colinesterasas. Metepec, Mexico: Centro Panamericano de Ecología Humana y Salud, ECO/OPS/OMS; 1991.

  12. McConnell R, Cedillo L, Keifer M, Palomo MR. Monitoring organophosphate insecticide-exposed workers for cholinesterase depression. J Occup Med 1992; 2:34-7.

  13. Coye MJ, Lowe JA, Maddy KT. Biological monitoring of agricultural workers exposed to pesticides: I. Cholinesterase activity determinations. J Occup Med 1986; 28: 619-27.

  14. Sigma Diagnostics. Cholinesterase (PTC). Quantitative, kinetics determination of cholinesterase activity in serum, plasma or whole blood at 405 nm. St. Louis,USA.

  15. Biotec Internacional S.A. Colinesterasa sérica. Método colorimétrico cinético. San José, Costa Rica.



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