Entrar/Registro  
INICIO ENGLISH
 
Revista Biomédica
   
MENÚ

Contenido por año, Vol. y Num.

Índice de este artículo

Información General

Instrucciones para Autores

Mensajes al Editor

Directorio






>Revistas >Revista Biomédica >Año 1999, No. 3


Arias D, Arauz S, Stornelli A,Stanchi NO, Renner E, Martino PE, Gatti M
Comparación de cuatro antígenos para la determinación de anticuerpos antileptospiras en serología por ensayo inmuno enzimático (ELISA) en leptospirosis canina
Rev Biomed 1999; 10 (3)

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 21
Paginas: 167-171
Archivo PDF: 26.55 Kb.


Texto completo




RESUMEN

Introducción. La Leptospirosis es una enfermedad, que frecuentemente pasa sub diagnosticada debido a la falta de una prueba de diagnóstico de fácil realización. Dentro de las técnicas de laboratorio, las inmuno-enzimáticas, se encuentran entre las de mayor sensibilidad. El presente trabajo tiene por objetivo el desarrollo de la técnica de ELISA, que permita la detección diagnóstica de la Leptospirosis en forma rápida, sencilla y económica.
Material y métodos. Se utilizaron como antígeno (Ag) cultivos vivos de Leptospira interrogans sv. icterohaemorrhagiae con distintos tratamientos: cultivo total, sonicado, termo resistente (TR) y TR sonicado. La prueba se realizó con 29 sueros caninos sospechosos clínicamente de leptospirosis, diluido en PBS 1/8; utilizándose 3 controles negativos y 3 controles positivos. Todos los sueros fueron comparados con la técnica de Aglutinación Microscópica (MAT) utilizando como Ag la misma cepa utilizada para ELISA.
Resultados. Los resultados de este estudio muestran que de 29 sueros analizados 10 (34%) dieron resultados positivos. Todos los controles positivos dieron desarrollo evidente de color en los pocillos, no variando su color los controles negativos. La correlación con la técnica de MAT fue de +0,80 (Ag sonicados) y +0,70 (Ag sin sonicar) según los antígenos utilizados.
Discusión. Esta técnica de rápida realización (150 minutos) podría ser adaptada a cualquier laboratorio y permitiría su uso como método de diagnóstico tamiz de Leptospirosis en caninos.


Palabras clave: Leptospirosis, caninos, ELISA.


REFERENCIAS

  1. Baranton G. Control and prevention of Leptospirosis. Leptospirosis on the African Continent. Proceedings of the CEC/STD3 Research Meeting, Harare, Zimbabwe, The Netherlands: W. Terpstra; 1992. p. 17-20.

  2. Boerrigher G. Direct measurement of in vitro antibody production using and enzyme-linked immuno sorbent assay. J Immunol Methods 1983; 61:377-84.

  3. Tersptra W, Collares-Pereira M. ELISA for the diagnosis of Leptospirosis. Leptospirosis on the African Continent. Proceedings of the CEC/STD3 Research Meeting, Harare, Zimbabwe, The Netherlands: W.Terpstra; 1992. p. 17-20.

  4. Terpstra W, Ligthart GS, Schone GJ. Serodiagnosis of human Leptospirosis by enzyme-linked.immunosorbentassay (ELISA). Zbl Bakt I Abt Orig 1980; A247:400-5

  5. Banfi E, Cinco M, Delia S, Castagnari L, Vuello V, Mastorianni CM, et al. New trends in the rapid serodiagnosis of Leptospirosis. Zbl Bakt Mikrobiol Hyg I Abt Orig 1984; A257:503-7.

  6. Chapman AJ, Adler B, Faine S. Antigen recognized by the human immune response to infection with Leptospira interrogans serovar hardjo. J Med Microbiol 1988; 25:269-78.

  7. Chapman AJ, Adler B, Faine S. Antigens recognized by the human immune response to vaccinationwith a bivalent hardjo/pomona leptospiral vaccine. FEMS Microbiol Immunol 1990; 64:111-8.

  8. Adler B, Murphy AM, Lacardi SA, Faine S. Detection of specific anti-leptospiral immunoglobulin M and G in human serum by solid phase enzyme-linked immunosorbent assay. J Clin Microbiol 1980; 11:452-7.

  9. Faine S. Guidelines for the control of Leptospirosis. Geneva: WHO; 1982. p. 171. Publication nº 67.

  10. Kurstak E. Progress in enzyme immunoassays: production of reagents, control designs, and interpretation. Bull WHO 1985; 63:793-811.

  11. Ritaco V. Algunas sugerencias de interés práctico en ELISA. Uppsala: FAO/IAEA; 1987. p. 5.

  12. Kish L, Wiley J. EPI 6.0 Epidemiological Software. OMS. 1995.

  13. Zochowski WJ, Waitkins SA, Palmer MF. The use of ELISA in the diagnosis of human leptospirosis. Isr J Vet Med 1987; 43:330-9.

  14. Costa E. Estado imunólogico en Leptospirosis. Rev Inst A Lutz 1981; 41,2:93-100.

  15. Milner A. Enzyme linked immunosorbent assay for determining specific immunoglobulin M in infection caused by Leptospira interrogans sv hardjo. J Clin Microbiol 1985; 22:539-42.

  16. Watt G. The rapid diagnosis of Leptospirosis: a prospective comparison of the dog EIA, on the genus specific microscopic agglutination test at different stages of illness. J Infec Dis 1988; 157:840-2.

  17. Ellis W. Animal Leptospirosis. Constraints in diagnosis and research. Leptospirosis on the African Continent. Proceedings of the CEC/STD3 Research Meeting, Harare, Zimbabwe. The Netherlands: W. Terpstra; 1993. p. 17-20.

  18. Cousins D. Use of EIA in a serological survey of Leptospirosis in sheep. Aust Vet J 1986; 63:36-9.

  19. Gussenhoven G, Van Der Hoorn M, Goris M, Terpstra W, Hartskeerl R, Mol B, et al. LEPTO dipstick, a dipstick assay for detection of Leptospira-specific immunoglobulin M antibodies in human sera. J Clin Microbiol 1997; 35:92-7.

  20. Stanchi N, Pennimpede E, Gómez C. Serología de la Leptospirosis experimental en cobayos (Cavia porcellus). Fenómeno de zona. Acta Bioq Clin Latin 1991; 25:29-31.

  21. Takimoto T. Affinity constant of antileptospiral monoclonal antibody, numbers of antigenic determinants on leptospira, and their influence on the microscopic agglutination test and ELISA. Microbiol Immunobiol 1988; 32:775-84.



>Revistas >Revista Biomédica >Año1999, No. 3
 

· Indice de Publicaciones 
· ligas de Interes 






       
Derechos Resevados 2019