Lobato-García BR, Rivera-Ochoa N, Rodríguez-Sánchez VM, Rodríguez-Morales P, Callejas-Morales F, Cervantes-Toache MC, Morales-Fierro C, Aguilar-Roustand HA, Arenas MDG, Moreno-Herrera J, Barrientos-Sánchez CD, Bueno-García S, Carmona-Cortés DA, Lozano BJE, Rodríguez-Trujillo L, Ceballos-Grajales N, Lara-Lince LC, León–Palmeros GA, Mendoza TDY, González HSL, Juárez AE

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 10
Paginas: 5-12
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RESUMEN

INTRODUCCIÓN. La enseñanza de las ciencias biomédicas en el nuevo paradigma educativo de la Universidad Veracruzana debe incluir la realización de prácticas de laboratorio que estimulen la curiosidad e interés científico en los alumnos. OBJETIVO. El presente trabajo describe un ejercicio de innovación educativa mediante la optimización de dos protocolos de inmunización utilizados en la enseñanza de las bases de la respuesta inmune humoral mediante la obtención de anticuerpos policlonales contra suero humano (Sh) y albúmina de huevo (Ah) en conejos adultos. MATERIAL Y MÉTODOS. Se detectaron puntos de mejora en los protocolos en que los alumnos podrían participar en su optimización e implementación. Específicamente, se planteó la optimización de la vía de administración del antígeno y de la vía de obtención de las muestras sanguíneas para la detección de los anticuerpos. Los antígenos fueron administrados en varias dosis por vía subcutánea en el dorso torácico y lumbar de los animales. Cada dosis de antígeno fue inoculada en estas regiones en diferentes puntos (máximo 8) para abarcar una mayor superficie de absorción. Los animales fueron sangrados 20 días después de la primera inmunización mediante la punción de la vena o arteria de la oreja. La presencia de anticuerpos específicos en los sueros inmunes se evidenció in vitro mediante la formación de un precipitado como resultado de la interacción antígenoanticuerpo. Los anticuerpos producidos fueron caracterizados por las técnicas de doble inmunodifusión (DIF), inmunodifusión radial (IDR) e inmunoelectroforesis (IEF).

REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

1. Huberman AM. Cómo se realizan los cambios en la educación: una contribución al estudio de la innovación. París: UNESCO-OIE; 1973.

2. Havelock RG. y Huberman AM. Innovación y problemas de la educación. Teoría y realidad en los países en desarrollo, Ginebra: UNESCO-OIE; 1980.

3. Carpenter PL. Inmunología y Serología 2a. ed. México: La Prensa Médica Mexicana; 1982.

4. Douglas FA, and Suckow MA. The Laboratory Rabbit. Boca Raton (USA): CRC Press; 1997.

5. Marton B y cols. Extracción de sangre de mamíferos y aves de laboratorio. Primer informe del grupo de trabajo BVA/FRAME/ RSPCA/UFAW sobre refinamiento. Anim Lab 1998; 27: 1-22.

6. University of Kentucky Medical Center. Standard operating procedure IACUC 103. Rabbit blood collection protocol. 98 Jun [citado en 2003]; 1 (1): [24 screens]. Disponible en: http://www.mc.uky.edu/dlar/ resources/sop/rabbleed.html

7. IACUC. Antibody Production in Rabbits. [citado en 2003]; 1 (1): [24 screens]. Disponible en: http://iacuc.yale.edu/policies/rabbits.html

8. Bledding and immunization techniques for polyclonal antibody production. [Citado en 2003]. Disponible en: http://www.molbio. princeton.edu/facility/restricted/viv_restricted/rabbitbleed.html.

9. SUNY Upstate Medical University. Guidelines for the production of policlonal and monoclonal antibodies in rodents and rabbits. 2001 Oct [citado en 2003]; 1 (1): [24 screens]. Disponible en: http://www. upstate.edu/dlar/Antibody%20Production.pdf

10. University of Florida. Guidelines for the production of policlonal and monoclonal antibodies in rodents and rabbits. [citado en 2003]; 1 (1): [24 screens]. Disponible en: http://www.health.ufl.edu/acs/infopi/ antibodis.html Optimización de protocolos