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2008, Número 4

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Rev Mex Urol 2008; 68 (4)


Estudio preliminar del comportamiento ácido-base en subpoblaciones espermáticas con estudio gasométrico

Gómez-Arzapalo VE, Herrera-Ávalos I, García de la Paz M, Uribe-Uribe MI, Villacorta-Argaez A
Texto completo Cómo citar este artículo Artículos similares

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 24
Paginas: 215-219
Archivo PDF: 145.82 Kb.


PALABRAS CLAVE

subpoblaciones espermáticas, maduración y capacitación espermática.

RESUMEN

Introducción: Siempre y cuando la saturación de O2, se lleve a cabo en un ambiente apropiado, la gasometría seminal en fresco de varones fértiles presenta una hiper-saturación de O2, superior a los gases en sangre arterial, con un pH oscilante entre 7.2 y 7.6. En los casos con problemas de fertilidad, están disminuidas la saturación y concentración de O2 en el plasma seminal y sobre todo muestran inversión de la saturación base en exceso (SBE).
Objetivo: Determinar el comportamiento del pH y los gases en poblaciones espermáticas en parejas con infertilidad.
Material y métodos (Diseño): Se estudiaron parejas con infertilidad primaria o secundaria, para analizar posibles causas durante la etapa reproductiva. Se procesaron 24 muestras seminales de varones cuyas edades oscilaron de 27 a 45 años, realizándose los estudios de las muestras seminales en el analizador de gases ABL 330 Radiometer 1990.
Resultados: Se realizó gasometría, en ambiente hiperbárico para medir la concentración y la saturación de O2 en las muestras de plasma seminal y se comparó con la de fluidos hemáticos, tanto arterial como venoso. Observamos que las tendencias en los resultados de las muestras seminales normales, con fertilidad comprobada, eran superiores a las del los fluidos hemáticos (tabla 1 y figura 1). En contraparte, en las muestras seminales con subfertilidad, la concentración y saturación de O2 fueron menores. En cuanto a los elementos de las bases, especialmente la correlación entre la SBE y las células morfológicamente anormales, resultó de –0.48988302, cifra negativa que condicionan incremento en la teratogénesis.
Conclusiones: Tanto la concentración como la saturación de O2 en plasma seminal son superiores a la concentración arterial. El pH seminal oscila entre 7.2 a 7.6, y existe hipoxia, aun con valores de 100 mm de Hg en PO2 o menores. Asimismo, se muestran las modificaciones en SBE. Datos que repercuten en la morfología, como la dinámica celular.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Carlson B. Embriología humana. Histología del desarrollo. 2a. ed. Madrid; Mosby-Elsevier; 2005.

  2. Amann RP, Hammerstedt RH, Veeramachaneni DN. The epididymis and sperm maturation: a perspective. Reprod Fertil Dev 1993;5:361-381.

  3. Jones R. Membrane remodeling during sperm maturation in the epididymis. Oxford Reviews of Reproductive Biology 1989;11:285-337.

  4. Esponda P. Spermatozoon maturation in vertebrates with internal fertilization. Microsc Electron Biol Cell 1991;15:1-23.

  5. Hegde UC. Epididymal sperm maturation proteins. Indian J Biochem Biophys 1996;33:103-110.

  6. Alvarez JG and Storey BT. Differential incorporation of fatty acids into and peroxidative loss of fatty acids from phospholipids of human spermatozoa. Mol Reprod Dev 1995;42:334-346.

  7. Toshimori K. Maturation of mammalian spermatozoa: modififications of the acrosome and plasma membrane leading to fertilization. Cell Tissue Res 1998;293:177-187.

  8. Yeung CH, De Geyter C, De Geyter M et al. Production of reactive oxygen species by and hydrogen peroxide scavenging activity of spermatozoa in an IVF program. J Assist Reprod Genet 1996;13:495-500.

  9. Flechon JE. Sperm surface changes during the acrosome reaction as observed by freeze-fracture. Am J Anat 1985;174:239-248.

  10. Myles DG, Hyatt H, Primakoff P. Binding of both acrosome-intact and acrosome-reacted guinea pig sperm to the zone pellucid during in vitro fertilization. Dev Biol 1987;121:559-567.

  11. McPherson SMG and Longo FJ. Chromatin structure-function alterations during mammalian spermatogenesis: DNA nicking and repair in elongating spermatids. Eur J Histochem 1993b;37:109-128.

  12. WHO laboratory manual for examination of human semen and sperm-cervical mucus 4th edition interaction. Madrid; published on behalf of the World Health Organization by Medical Panamericana, 2001.

  13. Reyes A, Rosado A, Gomez Arzapalo E. Requirement and conditions for capacitating of human spermatozoa. Fertil Steril 1973;27:203.

  14. Alvarez JG. Differential Production of reactive oxygen species by subsets of human spermatozoa at different stages of maturation. Hum Reprod 2001;16:1922-30.

  15. Bondani A, Gomez Arzapalo E, Aznar R, Giner J. Electrolyte composition of seminal fluid in normal and infertile. Fertil Steril 1973;24:150.

  16. Sloter ED, Mrchetti F, Eskenazi B, Weldon RH, Nath J, Cabreros D, An-Wyrobek AJ. Frequency of human sperm carrying structural aberrations of chromosome 1 increases with advancing age. Fertil Steril 2007; 87:1077- 86.

  17. Kurtis KM, Savitz DA, Arbuckle TE. Effects of cigarette smoking, caffeine consumption, and alcohol intake on fecundability. Am J Epidemiol 1997;146(1):32-41.

  18. Ferrer D, Fonseca C. Importancia biológica y participación en algunas funciones cardiovasculares y hematológicas. Medisan 1999;2(3):45-53.

  19. Guyton A, MD. Tratado de fisiología médica. 9a. ed. México, D.F.; McGraw-Hill Interamericana; 1997.




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