Morales TB, Rocha NML, Reynoso AJA, Chávez PR

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 13
Paginas: 58-62
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RESUMEN

Objetivo: Identificar la microbiota aerobia y anaerobia en pericoronitis del tercer molar, lo que ayuda a un manejo más adecuado del paciente y terapia antibiótica más acertada.
Diseño del estudio: En este estudio transversal descriptivo se incluyeron, previo consentimiento informado, 46 pacientes con pericoronitis subaguda de terceros molares, mayores de 14 años de ambos sexos, sin terapia antibiótica previos 3 meses y sin enjuagues bucales 3 semanas antes de su reclutamiento. Se les realizó una evaluación sistémica, clínica y radiográfica. Se tomó la muestra de la microbiota presente en la pericoronitis y se cultivaron los microorganismos para su determinación y clasificación. Se utilizó estadística descriptiva y tablas de frecuencia para analizar los resultados.
Resultados: El tercer molar 38, mostró la frecuencia más alta de pericoronitis, seguido del tercer molar 48. En la microbiota aerobia se encontró predominantemente, el Streptococcus Viridans, Streptococcus Milleri y el Staphylococcus Coagulasa Negativo. En la microbiota anaerobia, Peptoestreptococcus SP y los Bacteroides SP.
Conclusiones: La pericoronitis en los mexicanos ocurre más frecuentemente en mujeres adultas jóvenes con el tercer molar inferior izquierdo más comúnmente asociado con esta condición. La microbiota aerobia y anaerobia más prevalente está conformada por cocos y bacilos gramnegativos. Sin embargo, el predominio del Streptococcus Viridans y Streptococcus Milleri se relaciona con abscesos purulentos. La amoxicilina/ácido clavulánico o clindamicina, fueron eficaces en la remisión de la infección de la pericoronitis subaguda.

REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

1. Gay C, Berini L. Cirugía Bucal Vol. II. Editorial Oceano/Ergon. 3 ed. Barcelona, España. 2007. pp. 361-365.

2. Archer WH. Cirugía Bucal: Atlas paso por paso de Técnicas Quirúrgicas. Tomo I. Editorial Mundi Castellana. 2 ed. Buenos Aires, Rep. de Argentina. 1978. pp. 225-227.

3. Peltroche-Llacsahuanga H, Reichhart E, Schmitt W, Lütticken R, Haase G. Investigation of infectious organisms causing pericoronitis of the mandibular third molar. J Oral Maxillofac Surg 2000;58:611- 616.

4. Nitzan DW, Tal O, Sela MN, Shteyer A. Pericoronitis: A reappraisal of its clinical and microbiologic aspects. J Oral Maxillofac Surg 1985;43:510-516.

5. Rajasuo A, Sihvonen OJ, Peltola M, Meurman JH. Periodontal pathogens in erupting third molars of periodontally healthy subjects. Int J Oral Maxillofac Surg 2007;36:818-821.

6. Sixou JL, Magaud C, Jolivet-Gougeon A, Cormier M, Bonnaure-Mallet M. Evaluation of the mandibular third molar pericoronitis flora and its susceptibility to different antibiotics prescribed in France. J Clinic Microbiol 2003;41:5794-5797.

7. Castellanos JL, Díaz LM, Gay O. Medicina en odontología: Manejo dental de pacientes con enfermedades sistémicas. Editorial Manual Moderno. México. 2002. pp. 448.

8. Mohammed-Ali RI, Collyer J, Garg M. Osteomyelitis of the mandible secondary to pericoronitis of an impacted third molar. Dent Update 2010;37:106-108.

9. Sixou JL, Magaud C, Jolivet-Gougeon A, Cormier M, Bonnaure-Mallet M. Microbiology of mandibular third molar pericoronitis: incidence of beta-lactamase-producing bacteria. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod 2003;95:655-659.

10. Ayanbadejo PO y Umesi-Koleoso DC. A retrospective study of some socio-demograhic factors associated with pericoronitis in Nigerians. West Afr J Med 2007;26:302-305.

11. Bataineh AB, Al QM. The predisposing factors of pericoronitis of mandibular third molars in a Jordanian population. Quitessence Int 2003;34:227-231.

12. Lee DK, Kim BJ. The relation of pericoronitis to the position of the mandibular third molar. Taehan Chikkwa Uisa Hyophoe Chi 1989;27:201-209.

13. Brescó-Salinas M, Costa-Riu N, Berini-Aytés L, Gay-Escoda C Antibiotic susceptibility of the bacteria causing odontogenic infections. Med Oral Patol Oral Cir Bucal 2006;11:E70-75.