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Revista Mexicana de Patología Clínica y Medicina de Laboratorio

ISSN 0185-6014 (Impreso)
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2012, Número 4

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Rev Mex Patol Clin Med Lab 2012; 59 (4)


Comparación de dos nuevas técnicas de sedimentación y métodos convencionales para la recuperación de parásitos intestinales

Aquino MJM, Vargas SGB, López MB, Neri SE, Bernal RR
Texto completo Cómo citar este artículo Artículos similares

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 24
Paginas: 233-242
Archivo PDF: 65.05 Kb.


PALABRAS CLAVE

Técnicas de sedimentación, métodos coproparasitoscópicos, parásitos intestinales, etiología parasitaria, métodos diagnósticos, diagnóstico etiológico.

RESUMEN

En México las parasitosis intestinales tienen una amplia distribución, están colocadas dentro de las primeras 20 causas de enfermedad; en clínicas y hospitales se tienen implementadas diversas técnicas coproparasitoscópicas (CPS) para su diagnóstico. El propósito de este estudio fue comparar la capacidad de recuperación de formas parasitarias entre cuatro técnicas CPS: el examen directo, la técnica de concentración por flotación Ferreira y nuevas técnicas de sedimentación Spin-CON® y Macro-CON®. Se recolectaron un total de 100 muestras de heces, de 87 pacientes con edad de uno a 19 años, 39 (45%) mujeres y 48 (55%) hombres. Se detectaron 70 (70%) muestras positivas para parásitos patógenos, tres (3%) con parásitos comensales y 27 (27%) negativas. El índice kappa entre el examen directo y las técnicas de Spin-CON® y Macro-COM® fue 0.44 y 0.42 (concordancia moderada). En Ferreira con Spin-CON® y Macro-COM®, 0.77 y 0.80 (concordancia buena). Entre Spin-CON® y Macro-COM®, concordancia muy buena (0.95). Las técnicas de Spin-CON® y Macro-CON® con sensibilidad de 94 y 97% frente al examen directo y Ferreira. Entre Spin-CON® y Macro-CON®, la sensibilidad fue de 97% y la especificidad de 100%. Las técnicas Spin-CON® y Macro-CON® tienen una mayor eficacia de recuperación que las técnicas convencionales, el examen directo y la técnica de flotación.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Ximénez-García C. Las parasitosis intestinales en México. Cuadernos Funsalud (Fundación Mexicana para la Salud, A.C.) 2002; No. 36.

  2. Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica, Sistema Único Información No. 20, Vol. 20, Semana 20, 2003.

  3. Quihui-Cota L, Valencia ME, Crompton DWT, Phillips S, Hagan P, Díaz-Camacho SP et al. Prevalence and intensity of intestinal parasitic infections in relation to nutritional status in Mexican schoolchildren. Trans R Soc Trop Med Hyg 2004; 98: 653-659.

  4. Ávila-Rodríguez EH, Ávila-Rodríguez A, Araujo-Contreras JM, Villareal-Martínez A, Douglas T. Factores asociados a parasitosis intestinal en niños de la consulta ambulatoria de un hospital asistencial. Rev Mex Pediatr 2007; 74 (1): 5-8.

  5. Navone GT, Gamboa MI, Kozubsky LE, Costas ME, Cardozo MS et al. Estudio comparativo de recuperación de formas parasitarias por tres diferentes métodos de enriquecimiento coproparasitológico. Parasitol Latinoam FLAP 2005; 60: 178–181.

  6. Sánchez-Rivera GL, Díaz-Ruiz MG, Rojas-Tinoco ME. Estudio comparativo entre el método coproparasitoscópico de concentración por flotación de Faust y el método coproparasitoscópico de concentración por sedimentación con Brij-35. Bioquimia 2006; 31 (supl A): 90.

  7. Parija SC, Srinivasa H. The neglect of stool microscopy for intestinal parasites and possible solutions. Trop Med Inter Health 1999; 4 (7): 522-524.

  8. Truant A, Elliott SH, Kelly MT, Smith JH. Comparison of formalin-ethyl ether sedimentation, formalin-ethyl acetate sedimentation, and zinc sulfate flotation techniques for detection of intestinal parasites. J Clin Microbiology 1981; 13 (5): 882-884.

  9. Salazar SPM. Diagnóstico morfológico de las parasitosis. 3a ed. México: Méndez Editores; 2011.

  10. http://www.meridianbioscience.com/Content/Assets/Files/2.11%20Para-Pak/EcoFix/Package-Insert-ECOFIX.pdf. http://www.meridianbioscience.com/Content/Assets/Files/2.11%20Para-Pak/Spin%20Con%20200/Package-Insert-Para-Pak-SpinCon200.pdf. http://www.meridianbioscience.com/Content/Assets/Files/2.11%20Para-Pak/MacroCON/Package-Insert-Macro-CON.pdf

  11. Garcia LS. Bruckner DA. Diagnostic Medical Parasitology. 4th ed. Washington, DC: American Society for Microbiology; 2003.

  12. Garcia LS, Bullock-Iacullo SL et al. Procedures for the recovery and identification of parasites from the intestinal tract; approved guideline. Pensylvania, USA: Clinical Standard Laboratory Institute (CSLI); 2005.

  13. Devera R, Blanco Y, Requena I, Velásquez V. Diagnóstico de Blastocystis hominis: Bajo rendimiento de los métodos de concentración de formol-éter y sedimentación espontánea. Rev Biomed 2006; 17: 231-233.

  14. Mendoza D, Núñez FA, Escobedo A, Pelayo L, Fernández M, Torres D, Cordoví RA. Utilidad de 2 métodos coproparasitológicos y su empleo en un ensayo terapéutico antigiardiásico. Rev Cub Med Trop 2003; 55 (3): 174-178.

  15. Bernal-Redondo R, Hernández-Sánchez G, Ramírez-Hernández EC, Gámez-Aranda A, Martínez-Méndez L. Protozoos emergentes. Comparación de tres métodos de identificación. Rev Mex Patol Clin 1998; 45 (4): 193-199.

  16. Tello R, Canales M. Técnicas de diagnóstico de enfermedades causadas por enteropárasitos. Diagnóstico 2000; 39: 197-198.

  17. Young KH, Bullock SL, Melvin DM, Spruill CL. Ethyl acetate as a substitute for diethyl ether in the formalin-ether sedimentation technique. J Microbiology 1979; 10 (6): 852-853.

  18. Rodríguez-Ulloa C, Rivera-Jacinto M. ELISA y técnica de sedimentación espontánea para el diagnostico de infección por Giardia lamblia en muestras fecales de niños de Perú. Sal Pub Mex 2011; 53 (6): 516-519.

  19. Terashima A, Marcos L, Maco V, Canales M, Samalvides F, Tello R. Técnica de sedimentación en tubo de alta sensibilidad para el diagnóstico de parásitos intestinales. Rev Gastroenterol 2009; 29 (4): 305-310.

  20. Pajuelo-Camacho G, Luján-Roca D, Paredes-Pérez B, Tello-Casanova R. Aplicación de la técnica de sedimentación espontánea en tubo en el diagnóstico de parasitosis intestinales. Rev Biomed 2006; 17: 96-101.

  21. Bernal-Redondo R, Ramírez-Hernández E, Suárez-Torres, B, Hernández-Elizalde MA, Rodríguez-Monroy MC, Ruiz-Cervantes D, Vargas-Sánchez GB. Blastocystis hominis: Identificación etiológica en microscopia de luz. Rev Noticonaquic 2011; 55: 44-48.

  22. Nuñez F, González O, Bravo J, Escobedo A, González I. Parasitosis intestinales en niños ingresados en el Hospital Universitario Pediátrico del Cerro, La Habana, Cuba. Rev Med Trop 2003; 55 (1): 19-26.

  23. Marcos L, Maco V, Terashima A, Samalvides F, Miranda E, Gotuzzo E. Parasitosis intestinal en poblaciones urbana y rural en Sandia, Departamento de Puno, Perú. Parasitol Latinoam FLAP 2003; 58: 35-40.

  24. Velarde del Río LT, Mendoza-Romo MA. Prevalencia de Blastocystis hominis en menores de 12 años de una población mexicana urbana. Rev Cub Pediatr 2006; 78 (4): 33-39.




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