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ISSN 1028-4796 (Impreso)

2011, Número 1

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Rev Cubana Plant Med 2011; 16 (1)


Fitoesteroles y escualeno como hipocolesterolémicos en cinco variedades de semillas de Cucurbita maxima y Cucurbita moschata (calabaza)

Martínez AY, Martínez YO, Córdova LJ, Valdivié NM, Estarrón EM

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 30
Paginas: 72-81
Archivo PDF: 64.06 Kb.


RESUMEN

Introducción: la semilla de calabaza se ha estudiado y utilizado en el tratamiento de enfermedades parasitarias, hipertrofia benigna prostática, cistitis y como hipoglicemiante. Sin embargo, se desconocen investigaciones que refieran el uso de la semilla de calabaza y sobre todo de los fitoesteroles y escualeno como elementos hipocolesterolémicos en humanos.
Objetivo: determinar el contenido de fitoesteroles y escualeno de cinco variedades de semilla de calabaza para su posible uso como hipocolesterolémicos en humanos.
Métodos: se estudiaron semillas de calabaza de dos especies, Cucurbita maxima y Cucurbita moschata, de Cuba y México de las variedades Fifí, Marucha, INIVIT C- 88 (cubanas), Chata y Tapatía (mexicanas), se determinó el perfil de fitoesteroles (beta-sitosterol, campesterol, estigmasterol y estigmastenol) y escualeno mediante cromatografía gas-líquido.
Resultados: el contenido de extracto etéreo y grasa verdadera en las semillas osciló entre 331,5 y 346; 307 y 336 g/kg, respectivamente. La variedad fifí (Cucurbita moschata) presentó el mayor contenido de material insaponificable (35,0 g/kg), mostró diferencias significativas (p< 0,001) con las demás variedades y superior a las semillas oleaginosas convencionales. La concentración de escualeno y beta-sitosterol resultó superior en la variedad marucha (Cucurbita moschata) (40,27 y 202,59 mg/100 g), que indicó diferencias significativas (p< 0,001) con las restantes variedades. Las variedades chata y marucha presentaron el mayor contenido de campesterol (50,08 y 49,31 mg/100 g, respectivamente), así como la marucha encontró la mayor concentración de stigmasterol y estigmastenol (1,75y 28,63 mg/100 g), además, los contenidos resultaron superiores a los alimentos vegetales frecuentes en las dietas.
Conclusiones: los resultados obtenidos en la concentración de los fitoesteroles y escualeno en las variedades analizadas, sugieren el estudio de la semilla de calabaza como posible hipocolesterolémico en humanos.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Martínez Y, Valdivié M, La O A, Leyva E. Potencialidades de la semilla de calabaza como alimento para monogástricos. ACPA. 2008;4:20-3.

  2. Carbin B, Larsson B, Lindahl O. Treatment of benign prostatic hyperplasia with phytosterols. Brit J Urol. 1990;66:639-41.

  3. Martínez Y. Caracterización química de la harina de semilla de calabaza y su empleo de la alimentación de gallinas ponedoras y pollos de ceba [Tesis presentada en opción al Título de Doctor Ciencias Veterinarias]. Habana, Cuba; 2009.

  4. Bellma Menéndez A, Tillán Capó J, Menéndez Castillo RA, López González O, Carrillo Domínguez C, González Sanabria ML. Evaluación del extracto lipofílico de Cucurbita pepo L. sobre la hiperplasia prostática inducida por andrógenos. Rev Cubana Plant Med [serie en Internet]. 2006[citado 25 Mar 2009];11(2). Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S102847962006000200006& lng=es&nrm=is

  5. López OD, Márquez C, Salomón S, González ML. Extracción de lípidos de las semillas de Cucurbita pepo L. (calabaza). Rev Cubana Plant Med [serie en Internet]. 2009 Jun [citado 31 Ago 2010];14(2). Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1028- 47962009000200005&lng=es

  6. Tillán Capó JI, Bellma Menéndez A, Menéndez Castillo R, Carrillo Domínguez C. Actividad antagonista alfa-adrenérgica del aceite de semillas de Cucurbita pepo L. (calabaza) microencapsulado. Rev Cubana Plant Med [serie en Internet]. 2009 [citado 31 Ago 2010];14(3): 37-44. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1028- 47962009000300006&lng=es

  7. Kerise A, Maxine D, Teran C, Gardner M, Simon O. Influence of Pumpkin Seed Oil Supplementation on cardiovascular and Histological Outcomes in Female Nonovariectomized and Ovariectomized Rats. The FASEB Journal. 2008;22:719-31.

  8. Katan MB. Nutritional interventions: The evidence. Proc Nutr Soc. 2000;59:417- 8.

  9. Palou A, Picó C, Bonet A, Oliver P, Serra F, Rodríguez A, et al. El libro blanco de los esteroles vegetales. Barcelona, España: Editorial Unilever Foods; 2005.

  10. Sabeena F, Anandan R, Senthil K, Shiny S, Sankar S, Thankappan TK. Effect of squalene on tissue defense system in isoproterenolinduced myocardial infarction in rats. Pharmacol Res. 2004;50:231-6.

  11. AOAC. Official methods of analysis. Washington. D.C. (USA): Editorial Ass. Off. Agric. Chem, 16th; 1995.

  12. NMX-F-490-Alimentos, aceites, grasas. Determinación de la composición de ácidos grasos a partir de los C6 por cromatografía de gases. Ciudad México (México): Editorial NORMEX; 1999. p. 4-10.

  13. Giacometti J. Determination of aliphatic alcohols, squalene, a-tocopherol and sterols in olive oils: direct method involving gaschromatography of the unsaponifiable fraction following silylation. J Royal Society Chemistry. 2001;126:472-5.

  14. Massey FJ. The Kolmogorov-Smirnov test for goodness of fit. J American Statistical Asociation. 1951:46:68-78.

  15. Bartlett M. Properties of sufficiency and statistical tests. Proceedings of the Royal Society of London. 1937;160:268-82.

  16. Duncan B. Multiple ranges and multiple F test. Biometrics. 1955;11:1-42.

  17. Babu US, Wiesenfeld P W. Nutritional and Hematological Effects of Flaxseed. Washington. D.C. (USA): Editorial Lilian Thompson and Stephen Cunnane; 2003. p. 150-73.

  18. Ayerza R, Coates W. Dietary Levels of Chia: Influence on yolk cholesterol, lipid content and fatty acid composition for two strains of hens. Poult Sci. 2000;78:724- 39.

  19. Anwar F, Shahzad A, Shahid C, Abdullah I, Hussain H. Evaluación de la degradación oxidativa del aceite de soja almacenado a temperatura ambiente y a la luz solar. Grasas y Aceites. 2007;58:390-5.

  20. FEDNA. Tablas FEDNA de composición y valor nutritivo de alimentos para la formulación de piensos compuestos (2ª ed.). Madrid, España: Fundación Española para el Desarrollo de la Nutrición Animal; 2003. p. 1-423.

  21. Conchillo A, Valencia I, Puente A, Ansorena D, Astiasarán I. Componentes funcionales en aceites de pescado y de alga. Nutr Hosp. 2006;21:369-73.

  22. Scientific Committee on Food. Opinion of the Scientific Committee on Food on an application from MultiBene for approval of plant-sterol enriched foods; 2002 [citado 31 Ago 2010]. p. 1-36. Disponible en: http://europa.eu.int/comm/food/fs/sc/scf/index_en.html

  23. Moreau RA, Whitaker BD, Hicks KB. Phytosterols, phytostanols, and their conjugates in foods: Structural diversity, quantitative analysis, and healthpromoting uses. Prog Lipid Res. 2002;41:457-500.

  24. Ostlund RE. Phytosterols in human nutrition. Annu Rev Nutr. 2002;22:533-49.

  25. Ostlund RE Jr., Racette SB, Okeke A, Stenson WF. Phytosterols that are naturally present in commercial corn oil significantly reduce cholesterol absorption in humans. Am J Clin Nutr. 2002;75:1000-4.

  26. Dawson PA, Rudel LL. Intestinal cholesterol absorption. Curr Opin Lipidol. 1999;10:315-20.

  27. Kamm W, Dionisi R, Hischenhuber C, Engel H. Authenticity assessment of fats and oils. Food Rev Int. 2001;17:249-90.

  28. Hiyoshi H, Yanagimachi M, Ito M, Ohtsuka I, Yoshida I, Saeki T, et al. Effect of ER-27856, a novel squalene synthase inhibitor on plasma cholesterol in rhesus monkeys: comparison with 3-hydroxy-3-methylglutaryl-CoA reductase inhibitors. J Lipid Research. 2000;41:1135-44.

  29. Dessi A, Deiana M, Day N, Rosa A, Banni S, Corongiu P. Oxidative stability of polyunsaturated fatty acids: efect of squalene. Eur J Lipid Sci Technol. 2002;104:506-12.

  30. Relas H, Gylling H, Miettinen T. Fate of intravenously administered squalene and plant sterols in human subjects. J Lipid Research. 2001;42:987-94.




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