medigraphic.com
ENGLISH

Revista Mexicana de Medicina de la Reproducción

  • Mostrar índice
  • Números disponibles
  • Información
    • Información general        
    • Directorio
  • Publicar
    • Instrucciones para autores        
  • medigraphic.com
    • Inicio
    • Índice de revistas            
    • Registro / Acceso
  • Mi perfil

2013, Número 2

<< Anterior Siguiente >>

Rev Mex Med Repro 2013; 5.6 (2)


Determinación del efecto de la temperatura en la reacción acrosomal espontánea en muestras seminales previas a procedimientos de reproducción asistida

Neri VP, Torres FV, Vielma VAV, Gaona AR
Texto completo Cómo citar este artículo Artículos similares

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 24
Paginas: 97-103
Archivo PDF: 740.99 Kb.


PALABRAS CLAVE

reacción acrosomal espontánea, temperatura, muestras seminales, reproducción asistida.

RESUMEN

Antecedentes: la capacitación espermática es un proceso dependiente del calcio y se relaciona con una cascada de cambios bioquímicos. El espermatozoide, ya capacitado, puede responder a los receptores de la zona pelúcida e incrementar aún más la concentración de calcio intracelular y con altas concentraciones de progesterona en el aparato genital femenino se induce la reacción acrosomal.
Objetivo: determinar el efecto de la temperatura de incubación en la reacción acrosomal espontánea en muestras seminales capacitadas previas a procedimientos de reproducción asistida.
Material y método: estudio prospectivo con muestras de semen obtenidas de 10 pacientes normoespérmicos con tres a seis días de abstinencia sexual; se usó el marcador óptico fluorescente fura ff-AM que permite detectar el incremento de calcio intracelular. Cada muestra se dividió en dos fracciones iguales: muestras capacitadas incubadas a temperatura ambiente (25°C) y muestras capacitadas incubadas a 37°C.
Resultados: no hubo diferencia significativa en la tasa de reacción acrosomal espontánea entre muestras seminales capacitadas mantenidas a temperatura ambiente y las incubadas a 37°C, aun después de cuatro horas de la capacitación; sin embargo, la reacción acrosomal espontánea tendió levemente a ser mayor en muestras incubadas a 37°C, porque después de la adición de progesterona, el influjo de calcio fue menor.
Conclusiones: si bien la temperatura es importante para la capacitación espermática, no lo es para la reacción acrosomal, de manera que los espermatozoides mantenidos a 25°C tienen la misma probabilidad de realizar una reacción acrosomal que los incubados a 37°C.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Darszon A, Nishigaki T, Wood C, Trevino CL, et al. Calcium channels and Ca2+ fluctuations in sperm physiology. Int Rev Cytol 2005;243:79-172.

  2. Baldi E, Luconi M, Bonaccorsi L, Forti G. Signal transduction pathways in human spermatozoa. J Reprod Immunol 2002;53:121-131.

  3. Cross NL, Razy-Faulkner P. Control of human sperm intracellular pH by cholesterol and its relationship to the response of the acrosome to progesterone. Biol Reprod 1997;56:1169-1174.

  4. Suarez SS, Wolf DP, Meizel S. Induction of the acrosome reaction in human spermatozoa by a fraction of human follicular fluid. Gamete Res 1986;14:107-121.

  5. O’Toole CM, Arnoult C, Darszon A, Steinhardt RA, et al. Ca(2+) entry through store-operated channels in mouse sperm is initiated by egg ZP3 and drives the acrosome reaction. Mol Biol Cell 200;11:1571-1584.

  6. Mahi CA, Yanagimachi R. The effect of temperature, osmolarity and hydrogen ion concentration on the activation and the acrosome reaction of Golden hamster spermatozoa. J Reprod Fertil 1973;35:55-66.

  7. Lenz RW, Ball GD, Leibfried ML, Ax RL, et al. In vitro maturation and fertilization of bovine oocytes are temperaturedependent processes. Biol Reprod 1983,29:173-179.

  8. Fleming AD, Kuehl TJ. Effects of temperature upon capacitation of guinea pig spermatozoa. J Exp Zool 1985;233:405- 411.

  9. Si Y. Temperature-dependent hyperactivated movement of hamster spermatozoa. Biol Reprod 1997;57:1407-1412.

  10. White DR, Phillips DM, Bedford JM. Factors affecting the acrosome reaction in human spermatozoa. J Reprod Fertil 1990;90:71-80.

  11. Yanagimachi R. In vitro acrosome reaction and capacitation of Golden hamster sperm by bovine follicular fluid and its fractions. J Exp Zool 1969;170:269-280.

  12. Mortimer D, Curtis EF, Camenzind AR, Tanaka S. The spontaneous acrosome reaction of human spermatozoa incubated in vitro. Hum Reprod 1989;4:57-62.

  13. Santi CM, Darszon A, Hernández-Cruz A. A dihydropyridinesensitive T-type Ca2+ current is the main Ca2+ current carrier in mouse primary spermatocytes. Am J Physiol 1996; 271:1583-1593.

  14. Arnoult C, Cardullo RA, Lemos JR, Florman HM. Activation of mouse sperm T-type Ca2+ channels by adhesion to the egg zona pellucida. Proc Natl Acad Sci USA 1996;93:13004- 13009.

  15. Arnoult C, Kazam IG, Visconti PE, Kopf GS, et al. Control of the low voltage-activated calcium channel of mouse sperm by egg ZP3 and by membrane hyperpolarization during capacitation. Proc Natl Acad Sci USA 1999;96:6757-6762.

  16. Linares-Hernández L, Guzmán-Grenfell AM, Hicks-Gómez JJ, González-Martínez MT. Voltage dependent calcium influx in human sperm assessed by simultaneous detection of intracellular calcium and membrane potential. Biochim Biophys Acta 1998;1372:1-12.

  17. Fraire-Zamora JJ, González-Martínez MT. Effect of intracellular pH on the depolarization-evoked calcium influx in human sperm. Am J Physiol 2004;287:1688-1696.

  18. Torres-Flores V, Picazo-Juárez G, Hernández-Rueda Y, Darszon A, et al. Sodium influx induced by external calcium chelation decreases human sperm motility. Hum Reprod 2011;26:2626-2635.

  19. González-Martínez MT, Bonilla-Hernández MA, Guzmán- Grenfell AM. Stimulation of voltage dependent calcium channels during capacitation and by progesterone in human sperm. Arch Biochem Biophys 2002;408:205-210.

  20. Grynkievicz G, Poenie M, Tsien RY. A new generation of calcium indicators with greatly improved fluorescent properties. J. Biol. Chem. 1985. 260:3440-3450.

  21. Marín-Briggiler CI, Tezón JG, Miranda PV, Vázquez-Levin MH. Effect of incubating human sperm at room temperature on capacitation-related events. Fertil Steril 2002;77:252- 259.

  22. Harper C, Cummerson JA, White MRH, Publicover S, et al. Dynamic resolution of acrosomal exocytosis in human sperm. J Cell Sci 2008;121:2130-2135.

  23. Tocanne JF, Dupou-Cézanne L, López A, Tournier JF. Lipid lateral diffusion and membrane organization. FEBS Lett 1989;257:10-16.

  24. Green S, Fishel S, Rowe P. The incidence of spontaneous acrosome reaction in homogeneous populations of hyperactived human spermatozoa. Hum Reprod 1999;7:1819-1822.




2020     |     www.medigraphic.com

Mi perfil

C?MO CITAR (Vancouver)

Rev Mex Med Repro. 2013;5.6

ARTíCULOS SIMILARES

CARGANDO ...