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Revista Cubana de Farmacia

ISSN 1561-2988 (Impreso)
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2014, Número 2

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Rev Cubana Farm 2014; 48 (2)


Producción a nivel de laboratorio de Clostridium septicum IRP15 para la formulación de una vacuna veterinaria

González RML, Parra PÁM, Arias PJ, Forero LM
Texto completo Cómo citar este artículo Artículos similares

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 7
Paginas: 250-260
Archivo PDF: 393.31 Kb.


PALABRAS CLAVE

fermentación, agitación, biorreactor, inóculo, cinética.

RESUMEN

Objetivo: establecer las condiciones de producción a nivel de laboratorio de la alfa toxina de Clostridium septicum IRP15 para la formulación de una vacuna veterinaria y la optimización del proceso de producción.
Métodos: se caracterizó y estandarizó la edad apropiada del inóculo para los cultivos en un fermentador New Brunswick Scientific 7 L. Las condiciones de cultivo fueron: cepa C. septicum IRP15, medio de cultivo VBH, 5 L/vaso de 7 L, inóculo de 250 mL (5 %), 37 ºC, 24 h, bajo agitaciones prueba de 0, 25 y 50 r.p.m. Se estableció el perfil cinético morfológico, de biomasa, consumo de sustrato y producción de toxina.
Resultados: para las fermentaciones de 0 y 25 r.p.m. no se presentó fase de adaptación; el microorganismo creció de manera exponencial hasta las 4 y 6 h de fermentación, consumiendo simultáneamente la mayor cantidad de glucosa presente en el medio. A partir de estas horas y hasta las 24, se realizó la prueba de DL50 en ratones y se destaca que a 25 r.p.m. se obtuvo el mayor título de toxina (1/23). En las fermentaciones a 50 r.p.m. se observó que el microorganismo experimenta una fase de adaptación de 4 h aproximadamente; con un retardo en producción de biomasa, consumo de glucosa y producción de toxina, condición que no resulta óptima para la producción del antígeno.
Conclusiones: la producción de toxina se presenta en la fase logarítmica y durante la fase estacionaria, asociándose así al crecimiento y al fenómeno de esporulación.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Hateway C. Toxigenic Clostridia. Clin Microbiol Rev. 1990;3(1):66-98.

  2. Ballard J, Bryant A, Stevens D, Tweten RK. Purification and characterization of the lethal toxin (Alpha Toxin) of Clostridium septicum. Infection and Immunity; 1992;60:784-90.

  3. Kaplan MM, Koprowsky H, Meslin FX. Laboratory Techniques in Rabies. Geneva: World Health Organization; 1996.

  4. Bergey's manual of systematic bacteriology. Clostridum septicum. Baltimore: Williams and Wilkins; 1984. p. 1197-8.

  5. Bernheimer AW. Paralelism in the lethal and hemolytic activity of the toxin of Clostridium septicum. J Exp Med. 1944;80:309-30.

  6. Ballard J, Crabtree J, Roe B, Tweten R. The primary structure of Clostridium septicum Alpha toxin Exhibits similarity with that of Aeromonas hydroprhila. Aerol Infect Immun. 1995;63(1):340-4.

  7. Doran P. Principios de Ingeniería de los Bioprocesos. Zaragoza: Editorial Acribia SA; 1998. p. 278-95.




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