medigraphic.com

2015, Número 3

<< Anterior Siguiente >>

Rev Mex Med Repro 2015; 7.8 (3)


Efecto inducido por la eliminación de calcio en la movilidad del espermatozoide humano capacitado

Neri-Vidaurri P, Martínez-Pérez L, Vielma-Valdez A, Gaona-Arreola R, Serviere-Zaragoza C, Torres-Flores V

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 19
Paginas: 124-132
Archivo PDF: 579.04 Kb.


RESUMEN

Objetivo: evaluar el efecto inducido por eliminación de calcio en la movilidad del espermatozoide humano.
Material y método: estudio prospectivo, efectuado con muestras de semen obtenidas de 12 pacientes normoespérmicos con 3-6 días de abstinencia sexual, obtenidas en el Centro Especializado en Esterilidad y Reproducción Humana, Hospital Ángeles, México, DF. El efecto de eliminar el calcio del medio se realizó con ácido tetraacético de etilenglicol, un quelante de Ca2+. Para observar el efecto en la movilidad de espermatozoides humanos se realizaron varias pruebas; el calcio externo se redujo de 2.5 a 68 nM con la adición de 3.5 mM de EGTA.
Resultados: se observó una reducción lenta del porcentaje de espermatozoides móviles que llega casi a cero, pero es reversible. El efecto de la remoción de Ca2+ del medio en la movilidad de los espermatozoides es mejor en espermatozoides no capacitados que en espermatozoides capacitados.
Conclusiones: el calcio es importante para activar y mantener la movilidad en los espermatozoides capacitados y su ausencia tiene mayor repercusión en la movilidad progresiva, principal parámetro a tomar en cuenta en la capacitación espermática y es esencial para que el espermatozoide logre llegar al ovocito y se realice la fecundación.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Suarez SS, Pacey AA. Sperm transport in the female reproductive tract. Hum Reprod Update 2006;12:23-37.

  2. Darszon A, Treviño CL, Wood C, Galindo B, et al. Ion channels in sperm motility and capacitation. Soc Reprod Fertil Suppl 2007;65:229-244.

  3. Litvin TN, Kamenetsky M, Zarifyan A, Buck J, Levin LR. Kinetic properties of "soluble" adenylyl cyclase. Synergism between calcium and bicarbonate. J Biol Chem 2003;278:15922-15926.

  4. Jin J, Jin N, Zheng H, Ro S, et al. CatSper3 and CatSper4 are essential for sperm hyperactivated motility and male fertility in the mouse. Biol Reprod 2007;77:37-44.

  5. Torres-Flores V, Picazo-Juárez G, Hernández-Rueda Y, Darszon A, González-Martínez MT. Sodium influx induced by external calcium chelation decreases human sperm motility. Hum Reprod 2011;26:2626-2635.

  6. Darszon A, Acevedo J, Galindo B, Hernández-González E, et al. Sperm channel diversity and functional multiplicity. Reproduc Review 2006;131:977-988.

  7. Carlson E, Westenbroek E, Quill T, Dejian R, et alCatSper1 required for evoked Ca2+ entry y control of flagellar function in sperm. Proc Natl Acad Sci USA 2003;100:14864-14868.

  8. Quill TA, Ren D, Clapham DE, Garbers DL. A voltage-gated ion channel expressed specifically in spermatozoa. Proc Natl Acad Sci USA 2001;98:12527-12531.

  9. Ren D, Navarro B, Perez G, Jackson AC, et al. A sperm ion channel required for sperm motility and male fertility. Nature 2001;413:603-609.

  10. Carlson AE, Burnett LA, del Camino D, Quill TA, et al. Pharmacological targeting of native CatSper channels reveals a required role in maintenance of sperm hyperactivation. PLoS One 2009;4:6844.

  11. Feng B, Bhattacharya A, Yanagimachi R. Ca2+ is essential for the motility of plasma membrane-intact, but not of demembranated, hamster spermatozoa. Andrologia 1988;20:155-162.

  12. Aaberg AR, Sauer MV, Sikka S, Rajfer J. Effects of extracellular ionized calcium, diltiazem and cAMP on motility of human spermatozoa. J Urol 1989;141:1221-1224.

  13. González-Martínez MT. Induction of a sodium-dependent depolarization by external calcium renoval in human sperm. J Biol Chem 2003;278:36304-36310.

  14. Linares-Hernández L, Guzman-Grenfell AM, Hicks-Gómez JJ, González-Martínez MT. Voltage-dependent calcium influx in human sperm assessed by simultaneous detection of intracellular calcium and membrane potential. Biochim Biophys Acta 1988;1372:1-12.

  15. Torres-Flores V, García-Sánchez NL, González-Martínez MT. Intracellular sodium increase induced by external calcium removal in human sperm. J Androl 2008;29:63-69.

  16. Lishko PV, Kirichok Y. The role of Hv1 and CatSper channels in sperm activation. J Physiol 2010;588:4667-4672.

  17. Ren D, Xia J. Calcium signaling through CatSper channels in mammalian fertilization. Physiology (Bethesda) 2010;25:165-175.

  18. Kirichok Y, Navarro B, Clapha DE. Whole-cell patch-clamp measurements of spermatozoa reveal an alkaline-activated Ca2+ channel. Nature 2006;439:737-740.

  19. Lishko PV, Botchkina IL, Fedorenko A, Kirichok Y. Acid extrusion from human spermatozoa is mediated by flagellar voltage-gated proton channel. Cell 2010;140:327-337.




2020     |     www.medigraphic.com