medigraphic.com
ENGLISH

Revista Mexicana de Ingeniería Biomédica

  • Mostrar índice
  • Números disponibles
  • Información
    • Información general        
    • Directorio
  • Publicar
    • Instrucciones para autores        
  • medigraphic.com
    • Inicio
    • Índice de revistas            
    • Registro / Acceso
  • Mi perfil

2013, Número 3

<< Anterior Siguiente >>

Rev Mex Ing Biomed 2013; 34 (3)


Sistema de Bajo Costo y Alto Rendimiento para Bioensayos Farmacológicos in vitro de Tejido Vivo

Bahena-Casales I, Torres-Cerón A, Laville A, Plata V, Hernández-Cruz A, Bargas J, Pérez-Ortega JE
Texto completo Cómo citar este artículo Artículos similares

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 27
Paginas: 227-242
Archivo PDF: 1005.81 Kb.


PALABRAS CLAVE

microscopía digital, led ultrabrillante, instrumentación virtual, bioensayo funcional de alto rendimiento.

RESUMEN

La potencialidad terapéutica de fármacos se averigua mediante estudios bioquímicos y celulares que nos hablan de sus acciones sobre vías de señalización y receptores. Sin embargo, en algunas enfermedades −por ejemplo, enfermedades neurológicas conocidas como “desórdenes del movimiento”−, los bioensayos realizados miden las acciones farmacológicas mediante valoraciones conductuales en modelos animales de las mismas. No se han logrado bioensayos que correlacionen la acción terapéutica de fármacos sobre la actividad del tejido vivo. Se puede medir la actividad de decenas de neuronas mediante imagenología de calcio en tejido vivo. Ciertos parámetros de esta actividad neuronal registrada in vitro reflejan su estado patológico, así como la acción terapéutica de fármacos determinados. No hay un sistema integrado orientado a estos bioensayos, por lo que se combinan diferentes equipos comerciales de manera independiente con costo final de alrededor de 100,000 USD. Presentamos un prototipo de un sistema integral encaminado a realizar este tipo de bioensayos: microscopía de epifluorescencia con calidad suficiente para adquirir y medir cuantitativamente la actividad celular del tejido vivo registrada in vitro pero de costo 10 veces menor −alrededor de 10,000 USD−. Se pueden realizar satisfactoriamente bioensayos funcionales de uso potencial en la industria farmacéutica, investigación y docencia.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Fox S.H., Katzenschlager R., Lim S.Y., Ravina B., Seppi K., Coelho M., Poewe W., Rascol O., Goetz C.G., Sampaio C. “The Movement Disorder Society Evidence-Based Medicine Review Update: Treatments for the Motor Symptoms of Parkinson’s Disease”., 2013; 28: S2-S41.

  2. Gerfen C.R., Surmeier D.J., “Modulation of Striatal Projection Systems by Dopamine”, Annual Review of Neuroscience, Jul. 2011; 34: 441-466.

  3. Blesa J., Phani S., Jackson-Lewis V., Przedborski S., “Classic and new animal models of Parkinson’s disease”, J. Biomed. Biotechnol., 2012;2012(845618):1-10.

  4. Yadav S., Dixit A., Agrawal S., Singh A., Srivastava G., Singh A.K., Srivastava P.K., Prakash O., Singh M.P., “Rodent models and contemporary molecular techniques: notable feats yet incomplete explanations of Parkinson’s disease pathogenesis”, Mol. Neurobiol., Oct., 2012; 46: 495-512.

  5. Patejdl R., Zettl U.K., “Animal models in neurology: drawbacks and opportunities”, Curr. Pharm. Des., 2012;18(29): 4443- 4452.

  6. Iderberg H., Francardo V., Pioli E.Y., “Animal models of L-DOPA-induced dyskinesia: an update on the current options”, Neuroscience, Jun 2012; 211: 13- 27.

  7. Chou K.L., “In the clinic: Parkinson disease”, Ann. Intern. Med., Nov 2012; 157(9):ITC5-1 - ITC5-16.

  8. Van Den Eeden S.K., Tanner C.M., Bernstein A.L., ‘Incidence of Parkinson’s Disease: variation by age, gender, and race/ethnicity”, Am. J. Epidemiol., 2‘003;157(11):1015-1022.

  9. Dorsey E.R., Constantinescu R., Thompson J.P., Biglan K.M., Holloway R.G., Kieburtz K., Marshall F.J., Ravina B.M., Schifitto G., Siderowf A., Tanner C.M., “Projected number of people with Parkinson disease in the most populous nations, 2005 through 2030”, Neurology, Jan 2007; 30;68(5):384-386.

  10. Braak H., Ghebremedhin E., Rüb U., Bratzke H., Del Tredici K., “Stages in the development of Parkinson’s diseaserelated pathology”, Cell Tissue Res., 2004; 318(1):121-134.

  11. Braak H., Bohl J.R., Müller C.M., Rüb U., de Vos R.A., Del Tredici K., “Stanley Fahn Lecture 2005: The staging procedure for the inclusion body pathology associated with sporadic Parkinson’s disease reconsidered”, Mov. Disord., Dec 2006; 21(12): 2042-2051.

  12. Worth P.F., “How to treat Parkinson’s disease in 2013”, Clin. Med., Feb. 2013;13(1): 93-96.

  13. Jankovic J., Stacy M., “Medical management of levodopa-associated motor complications in patients with Parkinson’s disease”, CNS Drugs., 2007;21(8): 677-692.

  14. Carrillo-Reid L., Tecuapetla F., Tapia D., Hernandez-Cruz A., Galarraga E., Drucker-Colin R., Bargas J., “Encoding network states by striatal cell assemblies”, J. Neurophysiol., 2008; 99(3): 1435-1450.

  15. Carrillo-Reid L.,Tecuapetla F., Ibanez- Sandoval O., Hernandez-Cruz A., Galarraga E., Bargas J., “Activation of the cholinergic system endows compositional properties to striatal cell assemblies”, J. Neurophysiol., 2009; 101(2):737-749.

  16. Carrillo-Reid L., Hernández-López S., Tapia D., Galarraga E., Bargas J., “Dopaminergic modulation of the striatal microcircuit: receptor-specific configuration of cell assemblies”, J. Neurosci., Oct. 19 2011; 31(42):14972- 14983.

  17. Jáidar O., Carrillo-Reid L., Hernández A., Drucker-Colín R., Bargas J., Hernández- Cruz A., “Dynamics of the Parkinsonian striatal microcircuit: entrainment into a dominant network state”, J. Neurosci., Aug 25 2010; 30(34):11326-11336.

  18. López-Huerta V.G., Carrillo-Reid L., Galarraga E., Tapia D., Fiordelisio T., Drucker-Colin R., Bargas J., “The balance of striatal feedback transmission is disrupted in a model of parkinsonism”, J. Neurosci., Mar 13 2013; 33(11):4964-4975.

  19. Infinity Optical Systems, MicroscopiU The Source for Microscopy Education 2000- 2013, NIKON collaboration. The Florida State University.

  20. SiledMR, “LEDs de POTENCIA”, Catálogo Siled 2011.

  21. Vulovic M., Rieger B., Van Vliet L.J., Koster A.J., “A toolkit for the characterization of CCD cameras for transmission electron microscopy”, Acta Cryst., 2010; 66(1):97-109.

  22. Technical reference manual. Grasshopper Express. Point GreyMR.

  23. User Manual Register Reference, Grasshoper GRAS- 50S5M-C, Point GreyMR.

  24. Technical application note TAN2007007. Sony R ICX625 CCD Image Sensor Specifications. Point Grey

  25. User Manual, LabVIEW R , National InstrumentsMR.

  26. Measurements Manual, LabVIEW R , National InstrumentsMR.

  27. Erik Cuevas, Daniel Zaldívar, Marco Pérez. Procesamiento digital de imágenes con MATLAB y Simulink. Alfaomega Ra-Ma (México), 2010.




2020     |     www.medigraphic.com

Mi perfil

C?MO CITAR (Vancouver)

Rev Mex Ing Biomed. 2013;34

ARTíCULOS SIMILARES

CARGANDO ...