2015, Número 3
<< Anterior Siguiente >>
Rev Cubana Med Trop 2015; 67 (3)
Actividad anti-plasmodial de especies de Solanaceae presentes en Cuba
Fernández-Calienes VA, Cuesta RO, Fuentes FV, Monzote FL, Mendiola MJ
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 33
Paginas:
Archivo PDF: 238.38 Kb.
RESUMEN
Introducción: el control de la malaria depende en gran medida de una terapia
efectiva. Muchos de los anti-maláricos actuales son de origen natural. Especies de la
flora cubana contienenmetabolitos anti-
Plasmodium. En este estudio, se identifican
extractos de
Solanaceae con actividad antiplasmodial promisoria.
Objetivo: evaluar la actividad esquizonticida frente a
Plasmodium berghei de 31 extractos de 7 especies, correspondientes a 5 géneros de plantas de
Solanaceae,
colectadas en el occidente de nuestro país y sin antecedentes de un estudio similar.
Métodos: se prepararon 31 extractos hidroalcohólicos (90 y 30% etanol) de
diferentes órganos de:
Brunfelsia undulata Sw.,
Datura stramonium L. var. tatula (L.) Torr.,
(Schltdl.) Axelius, Solandra longiflora Tuss., Solanum myriacanthum Dunal, Solanum seaforthianum And. y Solanum umbellatum Mill. La actividad de los extractos se evaluó in vitro frente a P. berghei y se determinó su citotoxicidad frente a fibroblastos humanos MRC-5.
Resultados: los extractos de B. undulata y S. umbellatum fueron inactivos. El extracto de tallos de S. seaforthianum mostró la actividad antiplasmodial más potente (CI50 = 3,9µg/mL) con excelente selectividad (18,2).
Conclusiones: se demostró la actividad anti-plasmodial in vitro de extractos de cinco especies de Solanaceae sin antecedentes de esta acción farmacológica. Se identificó un extracto con potente actividad esquizonticida frente a P. berghei y con excelente selectividad. Este resultado nos anima a continuar el estudio de la preparación vegetal de S. seaforthianum.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
World Health Organization. WORLD MALARIA REPORT; 2013. Disponible en:www.who.int/malaria/publications/world_malaria_report_2013/wmr13_resumen_pu ntos_clave.pdf .
Bathurst I, Hentschel C. Medicines for Malaria Venture: sustaining antimalarial drug development. TrendsParasitol. 2006;22:301-7.
Vial H, Taramelli D, Boulton IC, Ward SA, Doerig C, Chibali K, et al. CRIMALDDI: platform technologies and novel anti-malarial drug target. Malaria J. 2013;12:396.
JambouR, El-Assaad F, Combes V, Grau GE. In vitro cultures of Plasmodiumberghei- ANKA maintains infectivity of mouse erythrocyte inducing cerebral malaria. Malaria J. 2011;10:346.
Ploemen IH, Prudêncio M, Douradinha BG, Ramesar J, Fonager J, van Gemert GJ, et al. Visualization and quantitative analysis of the rodent malaria liver stage by real time imaging. PLoS One. 2009;4:e7881.
Mendiola J, Regalado EL, Fernández-Calienes A, Acuña D, Rojas L, Valdés O. Actividad antiplasmodialin vivode las esponjas Mycalelaxissima y Clathriaechinata. Rev Cubana MedTrop. 2012;64:244-55.
Fernández-Calienes A, Mendiola J, Scull R, Gutiérrez Y, Acuña D, Payrol JA, et al. In vitro antimalarial activity and cytotoxicity of some selected Cuban medicinal plants. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 2010;52:197-201.
Fernández-Calienes A, Mendiola J, Acuña D, Caballero Y, Scull R, Gutiérrez Y, et al. Actividad antimalárica y citotoxicidad de extractos hidroalcohólicos de seis especies de plantas usadas en la medicina tradicional cubana. Rev Cubana MedTrop. 2011;63:52- 7.
Fernández-Calienes A, Mendiola J, Acuña D, Scull R, Gutiérrez Y. Actividad antimalárica de un extracto hidroalcohólico de Bixaorellana L. Rev Cubana MedTrop. 2011;63:254-8.
León H, Alain H. Flora de Cuba. Contribuciones Ocasionales del Museo de Historia Natural Colegio La Salle 16, P. Fernández and Co.La Habana, Cuba. 1957;4:556.
Eich E.Solanaceae and Convolvulaceae: Secundarymetabolites. Ed: Springer. Universidad de Berlín; 2008.
Agata K, Kusiak J, Stępień B, Bergier K, Kuźniak E. Bioactive secondary metabolites produced by plants of the genus Physalis.PostepyHig Med Dosw. 2010;64:665-73.
Meira CS, Guimarães ET, Bastos TM, Moreira DR, Tomassini TC, Ribeiro IM, et al. Physalins B and F, seco-steroids isolated from Physalisangulata L., strongly inhibit proliferation, ultrastructure and infectivity ofTrypanosomacruzi. Parasitology. 2013;140:1811-21.
Pabón A, Escobar V, Vargas E, Cruz V, Notario R, Blair S, et al. Diosgenone synthesis, antimalarial activity and QSAR of analogues of this natural product. Molecules. 2013;18:3356-78.
Moreira RR, Martins GZ, Magalhães NO, Almeida AE, Pietro RC, Silva FA, et al. Invitro trypanocidal activity of solamargine and extracts from Solanumpalinacanthum and Solanumlycocarpum of Brazilian cerrado. AnAcad Bras Cienc. 2013;85:903-7.
Huber W, Koella JC. A comparison of three methods of estimating EC50 in studies of drug resistance of malaria parasites. Acta Trop. 1993;82:257-61.
Schlichtherle M, Wahlgren M, Perlmann H, Scherf A. Methods in malaria research, 3rd ed. Malaria Research and Reference Reagent Resource Center. Virginia; 2000.
Mossman T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assay. J Immunol Methods. 1983;65:55-63.
Al-Musayeib NM, Mothana RA, Matheeussen A, Cos P, Maes L. In vitro antiplasmodial, antileishmanial and antitrypanosomal activities of selected medicinal plants used in the traditional Arabian Peninsular region. BMC ComplementAlternat Med. 2012;12:49.
Knapp S. A revision of the Dulcamaroid Clade of SolanumL. (Solanaceae). PhytoKeys. 2013;22:1-432.
Mothana RA, Al-Musayeib NM, Al-Ajmi MF, Cos P, Maes L. Evaluation of the in vitro antiplasmodial, antileishmanial, and antitrypanosomal activity of medicinal plants used in saudi and yemeni traditional medicine. Evid Based Complement Alternat Med. 2014;2014:905639.
García-Huertas P, Pabón A, Arias C, Blair S. Evaluación del efecto citotóxico y del daño genético de extractos estandarizados de Solanum nudum con actividad anti- Plasmodium. Biomédica. 2013;33:78-87.
Cáceres A, López B, González S, Berger I, Tada I, Maki J, et al. Plants used in Guatemala for the treatment of protozoal infections. I. Screening of activity to bacteria, fungi and American trypanosomes of 13 native plants. J Ethnopharmacol. 1998;62:195-202.
Chen Y, Li S, Sun F, Han H, Zhang X, Fan Y, et al. In vivo antimalarial activities of glycoalkaloids isolated from Solanaceae plants. Pharm Biol. 2010;48:1018-24.
Kew and Missouri Botanical Garden. The plant list. 2010. [citado 18 de enero de 2015]. Disponible en:www.theplantlist.org/tpl/search?q=.
Gaire BP, Subedi L. Areview on the pharmacological and toxicological aspects on Daturastramonium. J Integr Med. 2013;11:73-9.
Dabur R, Ali M, Singh H, Gupta J, Sharma GL. A novel antifungal pyrrole derivative from Daturametelleaves. Pharmazie. 2004;59:568-70.
Mangwala Kimpende P, Lusakibanza M, Mesia K, Tona L, Tits M, Angenot L, et al. Isolation, pharmacological activity and structure determination of physalin B and 5β,6β-epoxyphysalin B isolated from Congolese Physalis angulata L. Acta Crystallogr C. 2013;69:1557-62.
Gibson KA, Reese RN, Halaweish FT, Ren Y. Isolation and characterization of a bactericidal withanolide fromPhysalisvirginiana. Pharmacogn Mag. 2012;8:22-8.
Helvaci S, Kökdil G, Kawai M, Duran N, Duran G, Güvenç A, et al. Antimicrobial activity of the extracts and physalin D from Physalisalkekengi and evaluation of antioxidant potential of physalin D. Pharm Biol. 2010;48:142-50.
Freiburghaus F, Kaminsky R, Nkunya MH, Brun R. Evaluation of African medicinal plants for their in vitrotrypanocidal activity. J Ethnopharmacol. 1996;55:1-11.
Choudhary MI, Yousuf S, Samreen, Ahmed S, Atta-Ur-Rahman. New leishmanicidalphysalins fromPhysalisminima.Nat Prod Res. 2007;21:877-83.
Fuchino H, Sekita S, Mori K, Kawahara M, Satake M, Fiuchi F. A new leishmanicidal saponin from Brunfelsia grandiflora. Chem Pharm Bull. 2008;56:93-6.