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Revista Cubana de Plantas Medicinales

ISSN 1028-4796 (Impreso)
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2016, Número 2

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Rev Cubana Plant Med 2016; 21 (2)


Extracción de compuestos fenólicos y actividad antioxidante de hojas de Bixa orellana L. (achiote)

Sepúlveda RCT, Ciro GGL, Zapata MJE
Texto completo Cómo citar este artículo Artículos similares

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 26
Paginas: 133-144
Archivo PDF: 192.73 Kb.


PALABRAS CLAVE

Bixa orellana L., actividad antioxidante, metodología de superficie de respuesta, fenoles totales.

RESUMEN

Introducción: Bixa orellana L. también conocida como achiote, es una planta con un rico depósito de compuestos bioactivos, tales como, saponinas, alcaloides y flavonoides, a los cuales se les atribuyen propiedades fisiológicas entre las que se encuentran: actividad antimicrobiana, antiinflamatoria, antialérgica, antiviral, anticancerígena, antioxidante, entre otras.
Objetivos: evaluar el efecto del tiempo de extracción y la relación solvente/sobre el contenido de fenoles totales, así como el efecto del contenido de sólidos y el pH de la solución, sobre la actividad antioxidante del extracto de hojas de B. orellana.
Métodos: el contenido total de fenoles fue evaluado por el método de Folin-Ciocalteu. La actividad antioxidante se determinó por los métodos espectrofotométricos de reacción con el radical 2,2´-azino-bis (3-etilbenzotiazolin-6- ácido sulfónico) y la medida de la capacidad reductora sobre el Fe+3, los resultados se expresaron como micromoles de equivalentes Trolox por gramo de extracto (µmol ET.g-1).
Resultados: las condiciones del proceso que más favorecen la extracción de compuestos fenólicos desde las hojas de Bixa orellana L. son: tiempo de extracción de 60 h y relación solvente/hojas (v/p) de 4/1. El contenido máximo de fenoles totales fue de 144,77 ± 9,66 mgAT.g-1, que al someterlo a una solución de pH de 8 y 11,7 °Brix, presenta una actividad antioxidante de 4406,83 ± 43,30 µmol ET.g-1 por el método de reacción con el radical 2,2´-azino-bis (3-etilbenzotiazolin-6- ácido sulfónico) y 4547,22 ± 53,19 µmolET.g-1 por el método de medida de la capacidad reductora sobre el Fe+3.
Conclusiones: se demostró que la cantidad de fenoles totales extraídos de hojas de B. orellana dependen de la relación solvente/material vegetal y del tiempo de extracción; asimismo, se encontró que el pH tiene efecto sobre la actividad antioxidante determinada por la reacción con el radical 2,2´-azino-bis (3- etilbenzotiazolin-6- ácido sulfónico) y la medida de la capacidad reductora sobre el Fe+3.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Tiwari BK, Valdramidis O, Donnell CP, Muthukumarappan K, Bourke P, Cullen PJ, et al. Application of Natural Antimicrobials for Food Preservation. J AgrFood Chem. 2009;57(14):5987-6000.

  2. Mathenjwa SA, Hugo CJ, Bothma C, Hugo A. Effect of alternative preservatives on the microbial quality, lipid stability and sensory evaluation of boerewors. Meat Sci. 2012;91(2):165-72.

  3. Xu W, Qu W, Huang K, Guo F, Yang J, Zhao H, et al. Antibacterial effect of Grapefruit Seed Extract on food-borne pathogens and its application in the preservation of minimally processed vegetables. Postharvest Biol Tec. 2007;45(1):126-33.

  4. Gutiérrez-Larraínzar M, Rúa J, Caro I, de Castro C, de Arriaga D, García-Armesto MR, et al. Evaluation of antimicrobial and antioxidant activities of natural phenolic compounds against foodborne pathogens and spoilage bacteria. Food Control. 2012;26(2):555-63.

  5. Berk Z. Chapter 16 - Spoilage and preservation of foods. Food Process Engineering and Technology. San Diego: Academic Press; 2009. p. 351-4.

  6. Ciro Gómez GL, Quintana Castillo JC, Alarcón Pérez JC, Zapata Montoya JE. Extracto etanólico de hojas de Bixa orellana L.: un potencial conservante de alimentos. Interciencia. 2012;37(7):547-51.

  7. Alamed J, Chaiyasit W, McClements DJ, Decker EA. Relationships between Free Radical Scavenging and Antioxidant Activity in Foods. J Agr Food Chem. 2009;57(7):2969-76.

  8. Zieliński H, del Castillo MD, Przygodzka M, Ciesarova Z, Kukurova K, Zielińska D, et al. Changes in chemical composition and antioxidative properties of rye ginger cakes during their shelf-life. Food Chem. 2012;135(4):2965-73.

  9. Wardhani DH, Fuciños P, Vázquez JA, Pandiella SS. Inhibition kinetics of lipid oxidation of model foods by using antioxidant extract of fermented soybeans. Food Chem. 2013;139(1-4):837-44.

  10. Kunyanga CN, Imungi JK, Okoth MW, Biesalski HK, Vadivel V. Total phenolic content, antioxidant and antidiabetic properties of methanolic extract of raw and traditionally processed Kenyan indigenous food ingredients. LWT - Food Sci Technol. 2012;45(2):269-76.

  11. Lourido Pérez HdlC, Martínez Sánchez G. La Bixa orellana L. en el tratamiento de afecciones estomatológicas, un tema aún por estudiar. Rev Cubana Farm. 2010;44:231-44.

  12. Viuda M, Ciro GL, Ruiz Y, Zapata JE, Sendra E, Pérez JA, et al. In vitro Antioxidant and Antibacterial Activities of Extracts from Annatto ( Bixa orellanaL.) Leaves and Seeds. J Food Safety. 2012;32(4):399-406.

  13. Leon J. Botanica de los cultivos tropicales: Editorial Agroamérica, Instituto Interamericano de Cooperación para la Agricultura; 2000.

  14. Silva RB, Almeida CR, Chavasco JM, Chavasco JK. Antimycobacterial activity evaluation and MIC determination of liophilizated hydroalcoholic extracts of Bixa orellana L., Bixaceae. Rev Bras Farmacogn. 2010;20:171-4.

  15. Venugopalan A, Giridhar P. Bacterial growth inhibition potential of annatto plant parts. Asian Pac J Trop Biomed. 2012;2(3, Supplement):S1879-S82.

  16. Yolmeh M, Habibi Najafi MB, Farhoosh R. Optimisation of ultrasound-assisted extraction of natural pigment from annatto seeds by response surface methodology (RSM). Food Chem. 2014;155(0):319-24.

  17. Singleton VL, Rossi J. Colorimetry of Total Phenolics with Phosphomolybdic- Phosphotungstic Acid Reagents. Am J Enol Vitic. 1965;16(3):144-58.

  18. Re R, Pellegrini N, Proteggente A, Pannala A, Yang M, Rice-Evans C, et al. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Bio Med. 1999;26(9-10):1231-7.

  19. Pulido R, Bravo L, Saura F. Antioxidant Activity of Dietary Polyphenols As Determined by a Modified Ferric Reducing/Antioxidant Power Assay. J Agr Food Chem. 2000;48(8):3396-402.

  20. Wong J, Muñiz DB, Martínez GCG, Belmares RE, Aguilar CN. Ultrasound-assisted extraction of polyphenols from native plants in the Mexican desert. Ultrason Sonochem; 2015.

  21. Sinha K, Chowdhury S, Saha PD, Datta S. Modeling of microwave-assisted extraction of natural dye from seeds of Bixa orellana (Annatto) using response surface methodology (RSM) and artificial neural network (ANN). Ind Crop Prod. 2013;41(0):165-71.

  22. Chan C-H, Yusoff R, Ngoh G-C. Modeling and kinetics study of conventional and assisted batch solvent extraction. Chem Eng Res Des. 2014;92(6):1169-86.

  23. Ciro G. Conservación de uchuva (Physalis peruviana L.), basada en la impregnación a vacío de extractos de plantas con actividad antimicrobiana y antioxidante. Medellín, Colombia: Universidad de Antioquia; 2012.

  24. Fleischer TC, Ameade EPK, Mensah MLK, Sawer IK. Antimicrobial activity of the leaves and seeds of Bixa orellana. Fitoterapia. 2003;74(1-2):136-8.

  25. Chen Y, Kao W, Lin K. Effects of pH on the total phenolic compound, antioxidative ability and the stability of dioscorin of various yam cultivars. Food Chem. 2008;107(1):250-7.

  26. Arabshahi S, Vishalakshi D, Urooj A. Evaluation of antioxidant activity of some plant extracts and their heat, pH and storage stability. Food Chem. 2007;100(3):1100-5.




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