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Revista Cubana de Plantas Medicinales

ISSN 1028-4796 (Impreso)
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2022, Número 2

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Rev Cubana Plant Med 2022; 27 (2)


Efecto del aceite esencial de Lippia graveolens Kunth (orégano mexicano) sobre la biopelícula de Salmonella Typhimurium

Rubio OA, Álvarez PB, Travieso NMC, Martínez VA, Pino PO, Espinosa CI
Texto completo Cómo citar este artículo Artículos similares

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 21
Paginas:
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PALABRAS CLAVE

Lippia graveolens, aceite esencial, biopelícula, Salmonella.

RESUMEN

Introducción: Las plantas de Lippia graveolens Kunth (sin: L. berlandieri Schauer) se han utilizado con fines terapéuticos para afecciones respiratorias y digestivas. El aceite esencial de plantas cultivadas en Cuba tiene una poderosa actividad antibacteriana sobre Salmonella enterica.
Objetivo: Evaluar la actividad del aceite esencial de plantas de Lippia graveolens Kunth cultivadas en Cuba sobre biopelículas de Salmonella Typhimurium.
Métodos: El efecto inhibidor de este aceite esencial sobre la formación de biopelículas por Salmonella enterica subsp. enterica serovar Typhimurium cepa ATCC 14028 se determinó mediante la reducción de biomasa con violeta cristal y la concentración mínima inhibidora de biopelícula se identificó mediante recuentos en placa. Se utilizaron ensayos de swimming y swarming para evaluar el efecto sobre las estructuras de motilidad. Además, se determinaron los efectos sobre las biopelículas preformadas y la concentración mínima de erradicación de biopelículas.
Resultados: El aceite esencial de L. graveolens inhibe la formación de biopelículas de S. Typhimurium y destruye las biopelículas preformadas sin generar células persistentes. Los valores de la concentración mínima inhibidora de biopelícula del aceite esencial de L. graveolens coincidieron con los de la concentración mínima de erradicación de biopelículas a 0,5 mg/mL. Las concentraciones inferiores a la concentración mínima inhibidora de biopelícula del aceite de L. graveolens no afectan los movimientos de swimming y swarming.
Conclusiones: El estudio reveló el efecto inhibidor del aceite esencial de L. graveolens sobre el biofilm de S. Typhimurium y muestra un candidato prometedor natural para la desinfección de este patógeno.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Rivero I, Duarte G, Navarrete A, Bye R, Linares E, Mata R. Chemical composition and antimicrobial and spasmolytic properties of Poliomintha longiflora and Lippia graveolens essential oils. J Food Sci. 2011;76(2):309-17. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1750-3841.2010.02022.x

  2. Hernández AF, Antonio J, Herrera H, Medrano JI, Manuel L. Producción y extracción de aceite de orégano (Lippia graveolens Kunth) bajo cultivo en la comarca lagunera. Rev Mex Cien. 2011 [acceso: 06/08/2021];2(3). Disponible en: http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S2007-11322011000100009

  3. Rubio Ortega A, Travieso Novelles M, Riverón Alemán Y, Peña Rodríguez J, Espinosa Castaño I, Pino Pérez O. Actividad antibacteriana de aceites esenciales de plantas cultivadas en Cuba sobre cepas de Salmonella enterica. Rev Salud Anim. 2018 [acceso: 06/08/2021];40(3):1-10. Disponible en: http://revistas.censa.edu.cu/index.php/RSA/article/view/998

  4. Rumbaugh KP, Sauer K. Biofilm dispersion. Nat Rev Microbiol. 2020. DOI: http://dx.doi.org/10.1038/s41579-020-0385-0

  5. Liu C, Sun D, Zhu J, Liu J, Liu W. The regulation of bacterial biofilm formation by cAMP-CRP: A mini-review. Front Microbiol. 2020;11:1-7. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2020.00802

  6. Rossi C, Chaves C, Serio A, Casaccia M, Maggio F, Paparella A. Effectiveness and mechanisms of essential oils for biofilm control on food-contact surfaces: An updated review. Crit Rev Food Sci Nutr. 2020;0(0):1-20. DOI: https://doi.org/10.1080/10408398.2020.1851169

  7. Vidal De Oliveira DC, Fernandes Júnior A, Kaneno R, Silva MG, Araújo Júnior JP, Cirone Silva NC, et al. Ability of Salmonella spp. to produce biofilm is dependent on temperature and surface material. Foodborne Pathog Dis. 2014;11(6). DOI: http://doi.org/10.1089/fpd.2013.1710

  8. Cadena M, Kelman T, Marco M, Pitesky M. Understanding antimicrobial resistance (AMR) profiles of Salmonella biofilm and planktonic bacteria challenged with disinfectants commonly used during poultry. Foods. 2019 [acceso: 14/08/2019];8(275). DOI: https://doi.org/10.3390/foods8070275

  9. Cruz CD, Shah S, Tammela P. Defining conditions for biofilm inhibition and eradication assays for Gram-positive clinical reference strains. BMC Microbiol. 2018;18(173):1-9. DOI: https://doi.org/10.1186/s12866-018-1321-6

  10. Benachour H, Ramdani M, Lograda T, Chalard P, Figueredo G. Chemical composition and antibacterial activities of Capparis spinosa essential oils from Algeria. Biodiversitas. 2020;21(1):161-9. DOI: https://doi.org/10.13057/biodiv/d210121

  11. Čabarkapa I, Čolović R, Đuragić O, Popović S, Milanov D, Pezo L. Anti-biofilm activities of essential oils rich in carvacrol and thymol against Salmonella Enteritidis. Biofouling. 2019;0(0):1-15. DOI: https://doi.org/10.1080/08927014.2019.1610169

  12. World Health Organization. Guidelines for drinking‑water quality: fourth edition incorporating the first addendum. WHO. 2017 [acceso: 06/08/2021]. Disponible en: https://apps.who.int/iris/handle/10665/254637

  13. García Heredia A, García S, Merino Mascorro JÁ, Feng P, Heredia N. Natural plant products inhibits growth and alters the swarming motility, biofilm formation, and expression of virulence genes in enteroaggregative and enterohemorrhagic Escherichia coli. Food Microbiol. 2016;59:124-32. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.fm.2016.06.001

  14. Organización Mundial de la Salud. Guías para la calidad del agua de consumo humano. 4th ed. OMS. 2018 [acceso: 06/08/2021]. Disponible en: https://apps.who.int/iris/handle/10665/272403

  15. Singh A, Gupta R, Tandon S, Pandey R. Thyme oil reduces biofilm formation and impairs virulence of Xanthomonas oryzae. Front Microbiol. 2017;8(JUN):1-16. DOI: http://dx.doi.org/10.3389/fmicb.2017.01074

  16. Di Rienzo JA, Casanoves F, Balzarini MG, Gonzalez L, Tablada M, Robledo CW. InfoStat Grupo InfoStat. FCA, Universidad Nacional de Córdoba, Argentina.; 2018. Disponible en: https://www.infostat.com.ar

  17. World Health Organization. Cleaning and disinfection of environmental surfaces in the context of COVID-19. World Heal Organ. WHO. 2020 [acceso: 06/08/2021]. Disponible en: https://apps.who.int/iris/handle/10665/332096

  18. Chelvam KK, Chai LC, Thong KL. Variations in motility and biofilm formation of Salmonella enterica serovar Typhi. Gut Pathog. 2014;6(2):1-10. DOI: https://doi.org/10.1186/1757-4749-6-2

  19. Lee CK, Anda J De, Baker AE, Bennett RR, Luo Y, Lee EY. Multigenerational memory and adaptive adhesion in early bacterial biofilm communities. PNAS. 2018;115(17):4471-6. DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.1720071115

  20. Olson ME, Ceri H, Morck DW, Buret AG, Read RR. Biofilm bacteria: formation and comparative susceptibility to antibiotics. Can J Vet Res. 2002 [acceso: 06/08/2021];66:86-92. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC226988

  21. Sadekuzzaman M, Mizan FR, Kim H, Yang S, Ha S. Activity of thyme and tea tree essential oils against selected foodborne pathogens in biofilms on abiotic surfaces. LWT - Food Sci Technol. 2017. DOI: https://doi.org/10.1016/j.lwt.2017.10.042




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