Boeta M, Zarco QL

Idioma: Español/Inglés
Referencias bibliográficas: 11
Paginas:
Archivo PDF: 30.95 Kb.

RESUMEN

El objetivo del presente estudio fue evaluar la utilización de leche descremada ultrapasteurizada comercial como diluyente para semen de burro, destinado a la inseminación artificial de yeguas, comparándolo con el diluyente de Kenney, ampliamente utilizado para la dilución de semen equino. Se utilizaron 28 yeguas divididas en dos grupos. Las yeguas del grupo testigo (n = 11) fueron inseminadas con semen diluido en Kenney; las del grupo experimental (n = 17) fueron inseminadas con semen diluido en leche descremada ultrapasteurizada. Todas las yeguas estaban clínicamente sanas y fueron evaluadas ultrasonográficamente para determinar el momento óptimo para la inseminación. Para todas las inseminaciones se utilizó semen de un solo burro, de raza Kentucky, cuya fertilidad había sido previamente probada. A los 15 días posinseminación se realizó diagnóstico de gestación para verificar la presencia de la vesícula embrionaria. El índice de concepción fue de 54.5% para el grupo testigo y de 76.5% para el grupo inseminado con semen diluido en leche descremada ultrapasteurizada. Los resultados del presente estudio sugieren que la leche descremada ultrapasteurizada comercial puede ser utilizada para la dilución de semen equino con resultados similares o mejores a los obtenidos con diluyentes químicamente definidos. La utilización de leche comercial tiene considerables ventajas, ya que es muy barata en comparación con otros diluyentes, se puede obtener en cualquier lugar, se mantiene estéril hasta ser abierta, y no requiere de ninguna preparación.

REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

1. 1. Jasko DJ, Bedford SJ, Cook NL, Mumford EL, Squires EL, Pickett BW. Effects of antibiotics on motion characteristics of cooled stallion spermatozoa. Theriogenology 1993;40:885-893.

2. 2. Pickett BW. Collection and evaluation of stallion semen for artificial insemination. In: McKinnon AO, Voss JL, editors. Equine reproduction. Philadelphia: Lea and Febiger, 1993:746-754.

3. 3. Jasko DJ, Hathaway JA, Schaltenbrand VI. Effect of seminal plasma and egg yolk on motion characteristics of cooled stallion spermatozoa. Theriogenology 1992;37:1241-1252.

4. 4. Thacker DL, Almquist JO. Diluters for bovine semen I. Fertility and motility of bovine spermatozoa in boiled milk. J Dairy Sci 1953;36:173-180.

5. 5. Province CA, Squires EL, Pickett BW, Amann RP. Cooling rates, storages temperatures and fertility of extended equine spermatozoa. Theriogenology 1985;23:925-934.

6. 6. Douglas RH, Ginther OJ. Effect of prostaglandin F2 alfa on length of diestrus in mares. Prostaglandins 1972;2:265-268.

7. 7. Zarco L, Boeta M. Manejo del servicio para lograr óptima fertilidad. Memorias del Segundo Curso de Reproducción Equina; 1995 mayo 8-11; México D.F. México (DF): Academia de Investigación en Biología de la Reproducción, 1995:7-14.

8. 8. Kenney RM, Bergman RV, Cooper WL, Morse GW. Minimum contamination techniques for breeding mares: techniques and preliminary findings. Proc Am Assoc Equine Pract 1975;21:327-335.

9. 9. Heiskanen ML, Huhtinen M, Pirhonen A, Maenpaa PM. Insemination results with stallion semen stored for two days. Acta Vet Scand 1994;35:257-262.

10. Householder DD, Pickett BW, Voss JL, Olar TT. Effect of extender, number of spermatozoa and HCG on equine fertility. J Equine Vet Sci 1981;1:9-13.

11. Squires EL, Amann RP, Mckinnon AO, Pickett BW. Fertility of equine spermatozoa cooled to 5 or 20° C. University College Dublin, Proceedings International Congress of Animal Reproduction and Artificial Insemination; 1988 June 26-30; Dublin Ireland. Dublin (Ireland): 1988:3:297-299.