medigraphic.com
Centro de Investigaciones Regionales Dr. Hideyo Noguchi, Universidad Autónoma de Yucatán

2019, Número 3

<< Anterior Siguiente >>

Rev Biomed 2019; 30 (3)


Evaluación de la citotoxicidad de nanogeles de polivinilpirrolidona (PVP) en fibroblastos murinos

García-Rodríguez LM, Díaz-Jiménez D, Perez-Guevara OL, Ges-Naranjo A, Rapado-Paneque M, Ojalvo-Garcia A, Verhe-Tamayo M, Martínez-Plous Y, Garcia-Hernandez L, Rivera-Tapia JA

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 18
Paginas: 131-136
Archivo PDF: 594.62 Kb.


RESUMEN

Introducción. Los nanogeles están siendo estudiados para diversas aplicaciones biomédicas. Una de las más relevantes es como portadores de fármacos con propósitos terapéuticos, incrementando la bioactividad y el transporte de componentes activos a sitios o células específicas.
Objetivo. Evaluar la citotoxicidad de nanogeles de polivinilpirrolidona (PVP) de 30 y 90 nm en fibroblastos murinos.
Materiales y métodos. Se evaluó la citotoxicidad de nanogeles de PVP a través de integridad lisosomal mediante el ensayo de captación del rojo neutro en fibroblastos murinos L-929.
Resultados. Los resultados de citotoxicidad mostraron que no existen efectos citotóxicos en células tratadas con los nanogeles de 30 nm a las concentraciones de 50, 100, 200 y 300 µg/ml durante 24 y 48 h. Sin embargo, los nanogeles de 90 nm a las 48 h presentaron cierta citotoxicidad al disminuir la sobrevida a menos de 70% de células vivas, sin embargo, a las 24 h no se observó este efecto.
Conclusión. Se obtuvieron nanogeles de PVP por radiación gamma con un tamaño promedio de 30 nm y 90 nm. La ausencia de citotoxicidad de los nanogeles sobre la línea celular L-929 los convierte en candidatos potenciales para aplicaciones biomédicas.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Hervella P, Lozano V, García-Fuentes M, Alonso MJ. Nanomedicine: New challenges and opportunities in cancer therapy. J Biomed Nanotechnol. 2008 Sep; 4(3): 276-292. DOI: https://doi.org/10.1166/jbn.2008.339

  2. Hasirci, N. Micro and nano systems in biomedicine in drug delivery. In: Mozafari MR. Nanomaterials and nanosystems for biomedical applications. Dordrecht: Springer; 2007. P. 1-26. https://www.springer.com/la/ book/9781402062889

  3. Rosiak JM. Nano-and microgels of poly (vinyl methyl ether) obtained by radiation techniques. In: Emerging applications of radiation in nanotechnology proceeding of a consultants meeting held in Bologna, Italy, 22-25 March 2004. P. 141-156. https://www-pub.iaea.org/ MTCD/Publications/PDF/te_1438_web.pdf

  4. Escalona RO, Quintanar GD. Nanogeles poliméricos: una alternativa para la adminnistración de fármacos. Rev Mex Cienc Farm. 2014 Jul-Sep; 45(3): 17-38. www. scielo.org.mx/pdf/rmcf/v45n3/v45n3a3.pdf

  5. Zarekar NS, Lingayat VJ, Pande VV. Nanogel as a novel platform for smart drug delivery system. Nanosci Nanotechnol Res. 2017 Mar; 4(1): 25-31. DOI: 10.12691/ nnr-4-1-4

  6. Sultana F, Manirujjaman IUH, Arafat M, Sharmin S. An overview of nanogel drug delivery system. J Appl Pharm Sci 2013 Sep; 3(8 Suppl 1): S95–S105. DOI: 10.7324/ JAPS.2013.38.S15

  7. Ges NAA, Viltres CH, Fonseca RD, Rapado PM, Aguilera CY. Radiation-induced synthesis of polyvinylpyrrolidone (PVP) nanogels. J Phys Sci Appl. 2016 Sep-Oct; 6(5): 21-26. DOI: 10.17265/2159-5348/2016.05.004

  8. Pecora R. Dynamic light scattering measurement of nanometer particles in liquids. J Nanopart Res 2000 Feb; 2: 123-131.https://link.springer.com/content/ pdf/10.1023%2FA%3A109067107182.pdf

  9. Repetto G, Del Peso A, Zurita JL. Neutral red uptake assay for the estimation of cell viability/cytotoxicity. Nat Protoc 2008 Jul; 3(7): 1125-1131. DOI:10.1038/ nprot.2008.75

  10. O´ Hare S, Atterwill CK. Methods in molecular biology in vitro toxicity testing protocols. New Jersey USA: Humana Press Inc. Totowa. 1995. P. 332. http://link. springer.com/content/pdf/10.1385%2F0896032825.pdf

  11. Mullick CS, Lalwani G, Zhang K, Yang JY, Neville K, Sitharaman B. Cell specific cytotoxicity and uptake of graphene nanoribbons. Biomaterials. 2013 Oct; 34(1): 283-293. DOI: 10.1016/j.biomaterials.2012.09.057

  12. Batalla MJ, Cuadros MA, San Martín-Martínez E. Potencial zeta en la determinación de carga superficial de liposomas. Lat Am J Phys Educ. 2014 Dec; 8(4): 4319-14319-6.https://dialnet.unirioja.es/servlet/ articulo?codigo=5196753

  13. Borenfreund E, Puerner JA. Toxicity determination in vitro by morphological alterations and neutral red absorption. Toxicol Lett. 1985 Feb-Mar; 24(2): 119-124. https://doi.org/10.1016/0378-4274(85)90046-3

  14. Chithrani BD, Ghazani AA, Chan WC. Determining the size and shape dependence of gold nanoparticle uptake into mammalian cells. Nano Lett. 2006 Apr; 6(4): 662– 668. DOI: 10.1021/nl052396o

  15. Chithrani BD, Chan WC. Elucidating the mechanism of cellular uptake and removal of protein-coated gold nanoparticles of different sizes and shapes. Nano Lett. 2007 Jun; 7(6): 1542-1550. DOI: 10.1021/nl070363y

  16. Gratton SE, Ropp PA, Pohlhaus PD, Luft JC, Madden VJ, Napier ME, et al. The effect of particle design on cellular internalization pathways. Proc Natl Acad Sci USA. 2008 Aug; 105(33): 11613-11618. https://doi. org/10.1073/pnas.0801763105

  17. Rejman J, Oberle V, Zuhorn IS, Hoekstra D. Sizedependent internalization of particles via the pathways of clathrin-and caveolae-mediated endocytosis. Biochem J. 2004 Jan; 377(1): 159-169. DOI: 10.1042/bj20031253

  18. Zhu, X., P. Lu, W. Chen y J. Dong. Studies of UV crosslinked poly (Nvinylpyrrolidone) hydrogels by FTIR, Raman and solid-state NMR spectroscopies. Polymer. 2010 Jun; 51(14): 3054-3063. DOI: 10.1016/j. polymer.2010.05.006




2020     |     www.medigraphic.com