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2010, Número 1

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Vet Mex 2010; 41 (1)


Comparación de dos métodos diagnósticos para la detección del virus de influenza porcina

Sánchez MDM, Carreón NR, Palacios AJM

Idioma: Español/Inglés
Referencias bibliográficas: 25
Paginas: 45-58
Archivo PDF: 209.26 Kb.


RESUMEN

Debido a la falta de una prueba rápida, sensible y específica para detectar la presencia del virus de influenza porcina, que ofrezca la ventaja de utilizar aquélla en condiciones de campo, es necesario probar diferentes opciones para obtener un diagnóstico rápido y confiable. Para ello se utilizaron 100 cerdos con signos de dicho virus; de cada uno de ellos se tomaron muestras de moco nasal obtenidas con hisopos estériles y se compararon dos métodos diferentes para la detección del virus de influenza porcina. El primero de ellos fue una prueba comercial, que está basada en una inmunocromatografía rápida diseñada para detectar virus de influenza tipo A en aves. El segundo método fue el aislamiento viral en cultivo celular en células MDCK sensibilizadas con tripsina; este método, ya descrito en otros trabajos, se comparó con el primer método a partir de muestras de moco nasal de cerdos sospechosos de estar infectados con el virus. Los resultados mostraron que en la prueba de inmunocromatografía, diez muestras fueron positivas y ocho en cultivo celular; la prueba de inmunocromatografía fue 100% sensible para detectar el virus de influenza. El desarrollo de este trabajo es importante, ya que ofrece opciones para el diagnóstico de influenza porcina en campo con el uso de la prueba rápida de inmunocromatografía y sugiere que los resultados deberán confirmarse en el laboratorio de diagnóstico mediante el aislamiento viral.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. FLEITES AM, BUENFIL RJ, CARRASCO CA, GUZMÁN RL, TAVERA AG, CORREA SJ. Perfil serológico de influenza porcina, Mycoplasma hyopneumoniae y Actinobacillus pleuropneumoniae en granjas de Yucatán, México. Vet Méx 2004; 35: 295-305.

  2. OLSEN CW, BROWN IH, EASTERDAY BC, VAN REETH K. Swine Influenza. In: STRAW B, ZIMMERMAN JJ, D´ALLAIRE S, TAYLOR DJ, editors. Diseases of swine. Iowa USA:Blackwell Publishing, 2006: 469-482.

  3. VAN REETH K. Swine Influenza: variations on an old theme. The European Surveillance Network for Influenza in pigs. [serial online] 2007 may [cited: 2007 jun 30] Available from: http://www.esnip.ugent.be/page4/page4.html.

  4. SKIBBE D, ZHOU ME, JANKE HB. Comparison of a commercial enzyme-linked immunoabsorbent assay with hemagglutination inhibition assay for serodiagnosis of swine influenza virus (H1N1) infection. J Vet Diagn Invest 2004; 16: 86-89.

  5. ZHOU ME, SENNE AD, LANDGRAF SJ, SWENSON LS, GENE E, ROSSOW K et al. Genetic reassortment of avian, swine, and human influenza A viruses in American pigs. J Virol 1999; 73: 8851-8856.

  6. GRAMER MR. Defining swine influenza virus. J Swine Health Prod 2005; 13: 157-160.

  7. OLSEN WC. Epidemiology of swine influenza. Proceedings of the Allen D. Leman Swine Conference; 1999 september 19-22; Saint Paul Minnesota. Saint Paul Minnesota: University of Minnesota college of Veterinary Medicine, Veterinary Outreach programs, 1999: 255-261.

  8. FESENKO EE, KIREYEV HD, GRYADUNOV DA, MIKHAILOVICH VM, GREBENNIKOVA VT, L’VOV KD et al. Oligonucleotide microchip for subtyping of influenza A virus. Influenza Other Respir Viruses 2007;1:121-129.

  9. GENE E. H1N1 and H3N2 swine influeza: optimizing sample selection to confirm your diagnosis and control disease. Proc Am Assoc Swine Pract 200; 311-312.

  10. JANKE BH. Diagnosis of swine influenza. Swine Health Prod 2000; 8: 79-84.

  11. CLAVIJO A, TRENZAN DB, JOLIE R, ZHOU ME. Comparison of embrionated chicken eggs whit MDCK cell culture for the isolation of swine influenza virus. Can J Vet Res 2002; 66: 117-121.

  12. REINA J, FERNANDEZ BV, BLANCO I, MUNAR M. Comparison of Madin-Darby canine kidney cells (MDCK) with a green monkey continuous cell line (VERO) and human lung embryonated cells (MRC-5) in the isolation of influenza A virus from nasopharyngeal aspirates by shell vial culture. J Clin Microbiol 1997; 35:1900-1901.

  13. HERMAN M, HAUGERUD S, MALIK SY, GOYAL MS. Improved in vitro cultivation of swine influenza virus. Int J Appl Res Vet Med 2005; 3: 124-128.

  14. FONI E, CHIAPPONI C, FRATTA E, GARBARINO C, BARIGAZZI G, MERENDA M. Detection of swine influenza virus by RT-PCR and standard methods. Proccedings 4th International Sympsium of Emerging and re-emerging Pig Disease 2003 June 29-July 2; Rome, Italy. Rome, Italy:University of Parma, Faculty of Veterinary Medicine, 2003: 270-271.

  15. SÁNCHEZ MM. Certificación de la concentración de masa de la isoenzima 2 de la creatinina – quinasa del material de referencia BCR 608 (tesis doctoral). Barcelona, España: Departamento de Bioquímica y Biología Molecular. Universidad Autónoma de Barcelona, 2000.

  16. MARTÍN CM. Práctica 8: Inmunocromatografía. Universidad Autónoma de Madrid. 2005. [serie en línea] 2005 mayo [Citado: 2008 mayo 14] Disponible en: http://www.uam.es/personal-pdi/ciencias/mariamc/lacteos/practica8.htm

  17. BAI RG, SAKODA Y, MWEENE SA, KISHIDA N, YAMADA T, MINAKAWA H et al. Evaluation of the ESPLINE® INFLUENZA A & B-N Kit for the diagnosis of avian and swine influenza. Microbiol Immunol 2005; 49: 1063-1067.

  18. SYNBIOTICS CORPORATION. Synbiotics corporation announces human submission for flue detect [serial online] 2008 march [cited: 2008 may 12] Available from: http://www.synbiotics.com/PR.htm.

  19. CHÁVEZ RS. Determinación de anticuerpos contra el virus de influenza porcina subtipo H3N2 en diferentes estados de la República Mexicana (tesis de licenciatura) México, DF: Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Universidad Nacional Autónoma de México, 2005.

  20. JIMÉNEZ NJ, MERCADO GC, CARREÓN NR, HERRADORA LMA. Determinación de anticuerpos contra el virus de influenza porcina subtipo H3N2 en cerdos de diferentes sistemas de producción en México. Memorias XLI Congreso de la Asociación Mexicana de Veterinarios Especialistas en Cerdos; 2006 julio 16-19; Ixtapa (Guerrero) México. México (DF): Asociación Mexicana de Veterinarios Especialistas en Cerdos, AC, 2006:200.

  21. TRUJILLO OME, CARREÓN NR, MERCADO GC, QUEZADA MF. Determinación de anticuerpos contra el virus de influenza H1N1 y H3N2 en sueros porcinos. Memorias XXXIX Congreso de la Asociación Mexicana de Veterinarios Especialistas en Cerdos; 2004 julio 28 al 1º agosto ; Puebla (Puebla) México. México (DF): Asociación Mexicana de Veterinarios Especialistas en Cerdos, AC, 2004: 181.

  22. BELTRÁN FR, TRUJILLO OME, MARTÍNEZ RR, SÁNCHEZ BJI. Identificación del virus de influenza porcina subtipos H1N1 y H3N2 mediante RT-PCR. Memorias XLII Congreso de la Asociación Mexicana de Veterinarios Especialistas en Cerdos; 2007 julio 25-28; Querétaro (Querétaro) México. México (DF): Asociación Mexicana de Veterinarios Especialistas en Cerdos, AC, 2007: 190.

  23. TSUDA Y, SAKODA Y, SAKABE S, MOCHIZUKI T, NAMBA Y, KIDA H. Development of an immunochromatographic kit for rapid diagnosis of H5 avian influenza virus infection. Microbiol Immunol 2007; 51: 903-907.

  24. ITO M, WARANABE M, NAKAGAWA N, IHARA T, OKUNO Y. Rapid detection and typing of influenza A and B by loop-mediated isothermal amplification: comparison with immunochromatography and virus isolation. J Virol Meth 2006; 135: 272-275.

  25. BARIGAZZI G, FONI E, CHIAPPONI C, LEOTTI G, LONGO S, JOISEL F. Use of standard kit for the diagnosis of respiratory viral infections in pigs. Proceedings 4th International Symposium of Emergingand re-emerging Pig Disease; 2003 June 29-July 2; Rome, Italy. Rome, Italy: University of Parma, Faculty of Veterinary Medicine, 2003: 268-269.




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