2012, Número 4
Efectividad clínica de mallas de alginato de sodio para el control de la diseminación de infección con Escherichia coli y Staphylococcus epidermidis en heridas cavitadas con cierre primario en ratas
Luna del Villar VJ, Bernard BMJ, Tapia PG, Gutiérrez OL, Sumano LH
Idioma: Español/Inglés
Referencias bibliográficas: 26
Paginas: 285-293
Archivo PDF: 186.08 Kb.
RESUMEN
Se determinó el efecto potencial de cicatrización de mallas de alginato de sodio (AS) en heridas cavitadas infectadas
con
Escherichia coli y
Staphylococcus epidermidis, y se evaluó histopatológica y macroscópicamente la diseminación del
proceso infeccioso, formación de granuloma e irritación de los tejidos adyacentes. Se formaron 5 grupos de 24 ratas Wistar
hembras de 280 ± 34 g de la siguiente manera: grupo testigo con malla de AS sin inóculo; testigo con inóculo de
Escherichia coli sin malla; otro grupo testigo con inóculo de
Staphylococcus epidermidis, sin malla; grupo con malla de
AS + inóculo de
Escherichia coli; grupo con malla de AS + inóculo de
Staphylococcus epidermidis. Bajo anestesia se
realizaron las incisiones en los flancos absominales y se formaron los grupos. Se realizó un seguimiento macroscópico
e histopatológico de la zona afectada y se encontró que la presencia de mallas de AS evita o disminuye drásticamente,
tanto la diseminación de la infección a tejidos adyacentes como su irritación. Ello ocurre aun en presencia de
Escherichia
coli o de
Staphylococcus epidermidis. En los grupos testigo con malla de AS sin inóculo, testigo con inóculo de
Escherichia coli sin malla,
otro grupo testigo con inóculo de
Staphylococcus epidermidis sin malla y el grupo con
malla de AS + inóculo de
Escherichia coli, la reepitelización y la reducción en la herida fueron superiores a los grupos
que fueron inoculados con
Staphylococcus epidermidis. Los odd ratios generales mostraron que el riesgo de diseminación
fue 58 veces menor con el uso de malla de AS y
E. coli como organismo infectante (IC 95% 6.2-210). Los resultados
encontrados indican que la malla de AS es capaz de proporcionar condiciones adecuadas para la formación de
tejido de granulación, sin irritación en los tejidos adyacentes y evitando la diseminación de la infección en heridas cavitadas
y contaminadas por
E. coli y por
Staphylococcus epidermidis en ratas. Sin embargo, la presencia de granuloma
puede significar una desventaja cicatrizal o estética, como se observó en el grupo testigo con malla de AS sin inóculo.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
SLATTER DH. Textbook of small animal surgery. 2nd ed. Philadelphia, USA: Saunders WB, 2003.
KAISER AB, KERNODLE DS, PARKER RA. Low- Inoculum Model of Surgical Wound Infection. J Infect Dis 1992; 166: 393-399.
ORSINI J. Wound infections and antimicrobial therapy. In: GOURLEY IM, VASSEUR PB, editors. General Small Animal Surgery. Philadelphia: JB Lippincott, 1985:121.
PEPPAS NA, SCOTT JE. Controlled release from poly (vinyl alcohol) gels prepared by freezing-thawing processes. J Control Release 1992; 18: 95-100.
KILI S, TÜMURKAAN N, NSALDI S, GÜNAY C, ÜSTEK Z, YILMAZ B. Comparison of the effects of some wound healing materials on full thickness skin wounds in rabbits. Turk J Vet Anim Sci 2002; 26: 263-272.
UEYAMA A Y, ISHIKAWA B K, MANOC T, KOYAMA C T, NAGATSUKA D H, SUZUKI B K et al. Usefulness as guided bone regeneration membrane of the alginate membrane. Biomaterials 2002; 23: 2027-2033.
COHEN SB, MEIRISCH CM, WILSON HA, DIDUCH DR. The use of absorbable co-polymer pads with alginate and cells for articular cartilage repair in rabbits. Biomaterials 2003; 24: 2653-2660.
LEOR J, TUVIA S, GUETTA V, MANCZUR F, CASTEL D, WILLENZ U et al. Intracoronary injection of in situ forming alginate hydrogel reverses left ventricular remodeling after myocardial infarction in swine. J Am Coll Cardiol 2009; 54: 1014-1023.
CHOI YS, HONG SR, LEE YM, SONG KW, PARK MH, NAM YS. Study on gelatin-containing artificial skin: I. Preparation and characteristics of novel gelatin- alginate sponge. Biomaterials 1999; 20: 409-417.
THOMAS AKG, MOORE HK. Alginates from wound dressings activate human macrophages to secrete tumour necrosis factor-α. Biomaterials 2000; 21: 1797-1802.
MURAKAMI K, AOKI H, NAKAMURA S, NAKA- MURA S-I, TAKIKAWA M, HANZAWA M et al. Hydrogel blends of chitin/chitosan, fucoidan and alginate as healing-impaired wound dressings. Biomaterials 2010; 31: 83-90.
BALAKRISHNANA B, MOHANTYB M, UMASHAN- KARC PR, JAYAKRISHNANA A. Evaluation of an in situ forming hydrogel wound dressing based on oxidized alginate and gelatin. Biomaterials 2005; 26: 6335-6342.
HONG H-J, JIN S-E, PARK J-S, AHN WS, KIM C-K. Accelerated wound healing by smad3 antisense oligonucleotides-impregnated chitosan/alginate poly- electrolyte complex. Biomaterials 2008; 29: 4831-4837.
GROVES AR, LAWRENCE JC. Alginate dressing as a donor site haemostat. Ann R Coll Surg Engl 1986; 68: 1-2.
KIM JO, PARK JK, KIM JH, JIN SG, YONG CS, LI DX et al. Development of polyvinyl alcohol-sodium alginate gel-matrix-based wound dressing system containing nitrofurazone. Int J Pharm 2008; 359: 79-86.
HASHIMOTO T, SUZUKI Y, TANIHARA M, KAKI- MARU Y, SUZUKI K. Development of alginate wound dressings linked with hybrid peptides derived from laminin and elastin. Biomaterials 2004; 25: 1407-1414.
ALINE SA. Animales de laboratorio y la Norma Oficial Mexicana (NOM-062-ZOO-1999). Gaceta Médica Mexicana 2002; 138: 295-298.
RAYMOND CR, PAUL JS, SIÂN CO. Handbook of Pharmaceutical Excipients. 5th ed. London UK: Pharmaceutical Press, 2006.
HERDT TH. Fisiología y metabolismo gastrointestinal. En: CUNNINGHAM JG, KLEIN BG, editores. Fisiología Veterinaria. 4ª ed. Barcelona, España: Elsevier España, 2009: 300-310.
CARPENTER WC. Formulario de animales exóticos. 3ª ed. México DF: Intermédica, 2006.
HEAGERTY PJ, ZEGER SL. Marginal Regression Models for clustered Ordinal Measurements. J Am Stat Assoc 1996; 91: 1024-1036.
MATTHEW IR, BROWNE RM, FRAME JW, MILLAR BM. Subperiosteal behaviour of alginate and cellulose wound dressing materials. Biomaterials 1995; 16: 265-74.
PELUSO G, PETILLO O, RANIERI M, SANTIN M, AMBROSIO L, GALABRO D et al. Chitosan-mediated stimulation of macrophage function. Biomaterials 1994; 15: 1215-20.
UBEDA C, TORMO MA, CUCARELLA C, TROTONDA P, FOSTER TJ, LASA I et al. Sip, an integrase protein with excision, circularization and integration activities, defines a new family of mobile Staphylococcus aureus pathogenicity islands. Mol Microbiol 2003; 49: 193-210.
STUART LM, DENG J, SILVER JM, TAKAHASHI K, TSENG AA, HENNESSY EJ et al. Response to Staphylococcus aureus requires CD36-mediated phagocytosis triggered by the COOH-terminal cytoplasmic domain. J Cell Biol 2005; 170: 477-485.
DORIA-SERRANO MC, RUIZ-TREVIÑO FA, RIOS- ARCIGA C, HERNÁNDEZ-ESPARZA M, SANTIAGO P. Physical characteristics of poly (vinyl alcohol) and calcium alginate hydrogels for the immobilization of activated sludge. Biomacromolecules 2001; 2: 568-574.
Texto completo
Cómo citar este artículo
Artículos similares