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2018, Number 4

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Rev Mex Urol 2018; 78 (4)

Renal involvement associated with weak monoclonal components in Cuban patients with monoclonal gammopathy

Howland-Álvarez I, Cruz-Gómez Y, Zambrano-Mera JG

Language: Spanish
References: 22
Page: 243-253
PDF size: 413.49 Kb.


ABSTRACT

Objective: To analyze the relationship between the monoclonal bands detected in serum protein electrophoresis and renal involvement.
Materials and Methods: An observational, descriptive, and retrospective study was conducted based on the results of electrophoresis and immunofixation carried out at the Laboratorio de Diagnóstico Clínico del Centro de Investigaciones Médico Quirúrgicas in Havana, Cuba, within the time frame of January 2010 and December 2016. Inclusion criteria: patients with monoclonal component detected in electrophoresis and confirmed through immunofixation and patients with no monoclonal component in protein electrophoresis but detected in immunofixation performed for diagnostic suspicion of multiple myeloma. The protein electrophoresis tests in serum and 24-hour urine were conducted in agarose gel, utilizing the automated Hydrasys 2 system (Sebia®). The Kolmogorov-Smirnov test, chi-square test, and Student’s t test were employed for the statistical analysis and the 95% CI (a = 0.05) was considered statistically significant.
Results: 73 patients with monoclonal gammopathy were registered. Immunoglobulin values were within the reference limits in 17 patients. The majority of patients had elevated serum creatinine levels (129 ± 46 µmol/L), but only 7/73 had the diagnosis of kidney failure associated with the monoclonal component. Immunoglobulin concentration (IgG, IgA, and IgM), according to their reference values, was related to the type of monoclonal component detected. There was one case of IgD myeloma, with the onset of kidney failure, and normal serum protein electrophoresis.
Conclusions: Immunofixation continues to be a useful laboratory method for diagnosing monoclonal gammopathy, especially when protein electrophoresis does not suggest that alteration and kidney function can consequently be affected.


REFERENCES

  1. Llompart I, et al. Estudio retrospectivo de 1.193 componentes monoclonales detectados en Palma de Mallorca. https://doi.org/10.1016/j.labcli.2009.12.004

  2. Guía Clinica de Gammapatías Monoclonales, Castilla-León [en línea]. Dirección URL: http://www.sclhh.org/docs/pdf/ Oncoguia%20GM%20CyL%202013%20final.pdf.

  3. Bravo García-Morato M, et al. Guía de laboratorio para el diagnóstico y seguimiento de pacientes con gammapatías monoclonales. https://doi.org/10.1016/j.rce.2015.09.002

  4. Alejandre ME, et al. Gammapatía monoclonal de significado incierto: factores de pronóstico, evolución y riesgo. Acta Bioquim Clin Latinoam 2013;47(1):71-84.

  5. Howland AI, et al. Caracterización de gammapatías monoclonales. Invest Medicoquir 2012;4(2).

  6. Rajkumar SV, et al. International Myeloma Working Group updated criteria for the diagnosis of multiple myeloma. DOI: https://doi.org/10.1016/S1470-2045(14)70442-5

  7. Rodríguez R, et al. Caracterización clínica y de laboratorio del mieloma múltiple en el Instituto de Hematología e Inmunología. Rev Cuba Hematol Inmunol Hemoter 2013;29(4):382-97.

  8. Kyle RA, et al. Clinical course and prognosis of smoldering (asymptomatic) multiple myeloma. DOI: 10.1056/ NEJMoa070389

  9. Howland I, et al. Variables analíticas y clínicas en un estudio de gammapatías monoclonales [en línea]. Dirección URL: http://www.medigraphic.com/pdfs/invmed/cmq-2014/ cmq141g.pdf

  10. García-García P. Gammapatías biclonales: estudio retrospectivo de 47 pacientes. DOI: 10.1016/j.rce.2014.07.003

  11. Sebia. Electroforesis en gel de agarosa [en línea]. Dirección URL: https://www.sebia.com/es/groupeproduits/ electroforesis-en-gel-de-agarosa

  12. Declaración de Helsinki de la AMM – Principios éticos para las investigaciones médicas en seres humanos – WMA – The World Medical Association [en línea]. Dirección URL: https://www.wma.net/es/policies-post/declaracion-dehelsinki- de-la-amm-principios-eticos-para-las-investigaciones- medicas-en-seres-humanos/

  13. Giraudeaux V. Actuación ante el hallazgo fortuito de una gammapatía monoclonal. Acta Bioquím Clín Latinoam 2004;38(2):207-210.

  14. O’Connell TX, et al. Understanding and interpreting serum protein electrophoresis. Am Fam Physician 2005;71(1):105-112.

  15. Allué-Dieste E, et al. Gammapatía monoclonal en atención primaria. DOI: 10.1016/j.aprim.2009.06.026

  16. Howland I, et al. Gammapatía monoclonal: un diagnóstico a tener en cuenta. Invest Medicoquir 2012;3(2):87-94.

  17. Fulladosa X. Nefropatía asociada a gammapatías monoclonales. En: Lorenzo V, López Gómez JM, editores. Nefrología al Día. 2ª ed. [en línea]. Dirección URL: http://dev.nefro. elsevier.es/es-monografias-nefrologia-dia-articulo-nefropata- asociada-gammapatas-monoclonales-15

  18. Molina MJ, et al. Diagnóstico diferencial de las gammapatías monoclonales. An Med Interna 2006;23(11):546-51.

  19. Bovone SN, et al. Mieloma IgE. Dificultades de laboratorio para su tipificación. Medicina (Buenos Aires) 2014;74(6):472-3.

  20. Medina S, et al. Marcadores pronósticos en pacientes con gammapatía monoclonal de significado incierto. DOI: 10.1016/j.inmuno.2013.10.001

  21. Larson D, et al. Prevalence and monitoring of oligosecretory myeloma. N Engl J Med. 2012;367(6):580-1.

  22. Villar-Guimerans LM, et al. Análisis interlaboratorio de parámetros inmunoquímicos, paraproteínas y bandas oligoclonales. Informe técnico del IV Taller de Inmunoquímica de la Sociedad Española de Inmunología. DOI: 10.1016/ S0213-9626(09)70030-7




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